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王希lily新蟲 (初入文壇)
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[交流]
SDS-PAGE圖跑成這樣怎么辦呢?
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木蟲 (正式寫手)
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重組蛋白表達(dá)純化目的蛋白質(zhì)條帶模糊的相應(yīng)對(duì)策 電泳凝膠濃度選擇不當(dāng)。 低于10Kd的小分子蛋白質(zhì)要用Tricine膠。 靠近前沿的電泳帶分辨率不佳。根據(jù)分子量與凝膠孔徑的關(guān)系,選擇適當(dāng)濃度的凝膠。 蛋白質(zhì)樣品水解。注意除去蛋白質(zhì)樣品的內(nèi)源性的水解酶,不要反復(fù)凍融。 電泳時(shí)間過長或過短。溴酚藍(lán)達(dá)到分離膠的底部即應(yīng)該關(guān)閉電泳電源。 緩沖溶液、SDS都要新鮮配制。 避免加樣過多,提高分辨率。小體積樣品可給出窄帶,加樣體積根據(jù)樣品濃度和凝膠厚度靈活掌握。一般上樣體積為10-15uL(即2-10ug蛋白質(zhì))。 加熱變性后的蛋白質(zhì)樣品要放置到室溫即電泳,不要久放,因?yàn)榈鞍踪|(zhì)的二硫鍵在高溫下可能是會(huì)斷開,但是暴露于空氣中溫度降低會(huì)重新形成二硫鍵,而且可能在過久放置過程中蛋白質(zhì)可能會(huì)再折疊,更不要扔到冰箱里保存。 摘自:http://www.detaibio.com/topics/sds-page-faq.html |

木蟲 (小有名氣)
銀蟲 (小有名氣)
木蟲 (正式寫手)
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第一張圖不太好,第二張圖尚可。 想要跑一張漂亮的SDS-PAGE圖可以改進(jìn)一下方面: 1. 上樣前使用nano-drop或其他方法測(cè)定樣品總蛋白量,使得每個(gè)孔上樣量一致且在最佳蛋白量范圍,圖會(huì)好看很多 2. 根據(jù)目標(biāo)蛋白大小選擇合適濃度的SDS-PAGE凝膠,小蛋白用15%左右的凝膠,一般大小蛋白使用10-12%濃度凝膠 3. 制作凝膠時(shí)濃縮膠與分離膠比例要合適,如果是新手把握不準(zhǔn)可以買預(yù)制膠 4. 電泳時(shí)使用小電壓電泳,并使垂直電泳槽置于0-4度環(huán)境(可以使用冰盒,也可以至于4度冷柜) 5. 使用預(yù)染marker,電泳時(shí)可以實(shí)時(shí)觀察marker電泳情況 6. 蛋白條帶分辨率不高,可以嘗試使用小孔梳子聚集蛋白,往往可以提高條帶分辨率 |
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