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電轉(zhuǎn)影響因素及原理 已有3人參與
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影響電轉(zhuǎn)的因素及如何影響的,已經(jīng)電轉(zhuǎn)了很多次還是沒有克隆長出來,想了解下一些影響因素及原理,然后好去繼續(xù)實驗 發(fā)自小木蟲Android客戶端 |
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你怎么知道是沒轉(zhuǎn)進去呢?不管是電轉(zhuǎn)還是化轉(zhuǎn),效率都很高啊。不知道你的目的蛋白是什么,你可以試著換一下涂板的培養(yǎng)基。 發(fā)自小木蟲Android客戶端 |
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電轉(zhuǎn)原理: 電轉(zhuǎn)化法是利用瞬間高壓在細胞上打孔,因而需用冰冷的超純水多次洗滌處于對數(shù)生長前期的細胞,以使細胞懸浮液中應含有盡量少的導電離子。轉(zhuǎn)化效率為109~1010 轉(zhuǎn)化子/礸 DNA;對于熱激法,是利用冰冷的CaCl2處理對數(shù)生長期的細胞,可以誘導其產(chǎn)生短暫的“感受態(tài)‘,易于攝取外源DNA。轉(zhuǎn)化效率為106 ~107轉(zhuǎn)化子/礸 DNA。 影響因素: ⑴、細胞的生長狀態(tài)和密度 最好從-70℃或-20℃甘油保存的菌種中直接轉(zhuǎn)接用于制備感受態(tài)細胞的菌液。不要用已 經(jīng)過多次轉(zhuǎn)接,及貯存在4℃的培養(yǎng)菌液。細胞生長密度以每毫升培養(yǎng)液中的細胞數(shù)在5×107個左右為佳。即應用對數(shù)期或?qū)?shù)生長前期的細菌,可通過測定培養(yǎng)液的OD600控制。對TG1菌株,OD600為0.5時,細胞密度在5×107個/ml左右。(應注意OD600值與細胞數(shù)之間的關系隨菌株的不同而不同)。密度過高或不足均會使轉(zhuǎn)化率下降。 此外,受體細胞一般應是限制-修飾系統(tǒng)缺陷的突變株,即不含限制性內(nèi)切酶和甲基化酶的突變株。并且受體細胞還應與所轉(zhuǎn)化的載體性質(zhì)相匹配。 ⑵、質(zhì)粒dna的質(zhì)量和濃度 用于轉(zhuǎn)化的質(zhì)粒DNA應主要是超螺旋態(tài)的,轉(zhuǎn)化率與外源DNA的濃度在一定范圍內(nèi)成正比,但當加入的外源DNA的量過多或體積過大時,則會使轉(zhuǎn)化率下降。一般地,DNA溶液的體積不應超過感受態(tài)細胞體積的5%,1ng的cccDNA即可使50ul的感受態(tài)細胞達到飽和。 對于以質(zhì)粒為載體的重組分子而言,分子量大的轉(zhuǎn)化效率低,實驗證明,大于30kb的重組質(zhì)粒將很難進行轉(zhuǎn)化。此外,重組DNA分子的構型與轉(zhuǎn)化效率也密切相關,環(huán)狀重組質(zhì)粒的轉(zhuǎn)化率較分子量相同的線性重組質(zhì)粒高10~100倍,因此重組DNA大都構成環(huán)狀雙螺旋分子。 ⑶、試劑的質(zhì)量 所用的CaCl2等試劑均需是最高純度的,并用最純凈的水配制,最好分裝保存于4℃。 ⑷、防止雜菌和雜DNA的污染 整個操作過程均應在無菌條件下進行,所用器皿,如離心管,移液槍頭等最好是新的,并經(jīng)高壓滅菌處理。所有的試劑都要滅菌,且注意防止被其它試劑、DNA酶或雜DNA所污染,否則均會影響轉(zhuǎn)化效率或雜DNA的轉(zhuǎn)入。 ⑸、整個操作均需在冰上進行,不能離開冰浴,否則細胞轉(zhuǎn)化率將會降低。 |


上一條不小心發(fā)出去了 一樓CaCl2都出來了 這是電轉(zhuǎn) 哪來的CaCl2啊 講道理電轉(zhuǎn)的效率一般情況下很高 樓主最好把感受態(tài)制備和電轉(zhuǎn)流程寫一下 這樣便于別人找問題在哪里哦![]() 發(fā)自小木蟲IOS客戶端 |

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