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NanoFCMlxq

新蟲 (正式寫手)


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今天分享一篇發(fā)表在 J Extracell Vesicles(2020年IF=14.98)上的文章,名為《Establishment of a simplified dichotomic size-exclusion chromatography for isolating extracellular vesicles toward clinical applications》[1](建立一種應(yīng)用于臨床的簡(jiǎn)化的二分尺寸排除色譜法分離細(xì)胞外囊泡)。

細(xì)胞外囊泡(EVs)是一種具有不同的生物學(xué)或病理功能的細(xì)胞來源的顆粒。根據(jù)EV的生物發(fā)生和特征,可大致分為外泌體和微囊泡(MVs)。一般來說,外泌體是直徑為30-200nm的EV,隨著多泡核內(nèi)體(MVE)的成熟在細(xì)胞內(nèi)形成。如果不考慮細(xì)胞內(nèi)的起源,與外泌體大小相似的EV可以統(tǒng)稱為小EV(sEVs)。MVE膜與細(xì)胞質(zhì)膜融合后,可以釋放外泌體。與外泌體不同,MV是較大的EV,典型的直徑在500~1000nm之間。MV主要是通過質(zhì)膜的直接出芽,在細(xì)胞外釋放而形成的。然而,EV往往有更為復(fù)雜的亞群體。例如,Kowal等通過蛋白質(zhì)組學(xué)分析發(fā)現(xiàn)從人樹突狀細(xì)胞分離的不同EV亞型有共同的生物標(biāo)記物如flotillin和熱休克70kda蛋白質(zhì)(HSP70),同時(shí)也有一組五種蛋白質(zhì)在不同的人群種有不同的相對(duì)豐度。所有EV亞群之間的功能差異和特征尚不清楚。但是,人們普遍認(rèn)為EV在各種人類疾病的診斷、預(yù)后和治療方面具有重要價(jià)值,因?yàn)樗鼈償y帶組織和/或器官衍生的生物分子,如蛋白質(zhì)、RNA、DNA和脂質(zhì)。

EV生物標(biāo)志物的研究面臨著許多挑戰(zhàn),特別是在將分離和鑒定方法標(biāo)準(zhǔn)化應(yīng)用于臨床方面。此外,樣本收集、存儲(chǔ)、分析方法和樣本量在任何EV生物標(biāo)志物的驗(yàn)證階段都具有重要意義。正如MISEV2018和國(guó)際細(xì)胞外囊泡協(xié)會(huì)(ISEV)的其他立場(chǎng)文件所說,分離純化EV是在后續(xù)分析之前最重要和最困難的先決條件之一。特別是從復(fù)雜體液中分離EV往往處于純度和易于操作之間的兩難境地,這對(duì)現(xiàn)實(shí)臨床應(yīng)用都至關(guān)重要。在30多種生物樣本中,血漿/血清是生物標(biāo)志物發(fā)現(xiàn)和疾病診斷中使用最廣泛的樣本類型之一。然而,血漿/血清中存在多種生物分子或生物納米顆粒的大小和密度與EV相似,主要包括脂蛋白、亞細(xì)胞器、細(xì)胞碎片和病毒顆粒。其中,低/極低/高密度脂蛋白(LDL、VLDL、HDL)是EV分離中最常見的污染物之一,因?yàn)檠獫{中有~10^16脂蛋白/ml。MISEV2018建議可以分析幾種蛋白質(zhì)標(biāo)記物,以證明EV純度,包括那些能證明EV存在的標(biāo)志物,以及在共同分離時(shí)污染物的消耗。此外,蛋白質(zhì)單位顆粒比(顆粒/蛋白質(zhì)比)也是估算EV純度的一個(gè)重要參數(shù)。此外,Tian等人報(bào)道了另一種間接的方法,通過使用納米流式檢測(cè)技術(shù)(nFCM)將TritonX-100可破壞的顆粒與總顆粒的比例來估算EV純度。

目前人們認(rèn)為,超速離心法(UC),特別是密度梯度離心法是最被接受的高純度EV分離方法之一。但UC不能很容易地用于醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室,因?yàn)樗臅r(shí),顆;厥章实,需要大型儀器。在這里,將粒子回收率定義為回收粒子與輸入粒子的比值;谶^濾或沉淀的方法可能會(huì)遭受嚴(yán)重的蛋白質(zhì)污染或引入外源性化學(xué)物質(zhì)。相比之下,尺寸排除色譜(SEC)提供了一個(gè)重要的選擇,不需要大型儀器,同時(shí)分離純度與UC相當(dāng)。

SEC使用聚合物在柱中形成多孔固定相,允許不同大小的顆粒通過重力流或使用液相色譜系統(tǒng)進(jìn)行差異洗脫。雖然已知乳糜微粒、LDL和VLDL不能完全去除,但SEC可以有效地將EV從白蛋白等體液中大多數(shù)高含量的蛋白質(zhì)污染中分離出來。

大多數(shù)SEC分離EV的研究需要收集大約26個(gè)洗脫餾分,部分餾分可合并用于EV分析。事實(shí)上,對(duì)于臨床應(yīng)用,我們認(rèn)為使用重力流SEC進(jìn)行EV分離的簡(jiǎn)化方案具有顯著的需求。為了解決這個(gè)問題,需要評(píng)估SEC的三個(gè)方面。首先,需要充分的解決樹脂的選擇問題。交聯(lián)(CL)瓊脂糖基材料是EV分離中最常用的SEC樹脂之一,然而,這些材料尚未得到充分的比較。其次,應(yīng)對(duì)EV分離時(shí)的柱體積進(jìn)行優(yōu)化。10ml的柱體積是SEC中最常用的設(shè)置,而對(duì)于具有相同內(nèi)徑的柱,已有研究表明,增加柱體積可能有更好的分離性能。但是,到目前為止,據(jù)我們了解,重力流柱還沒有得到驗(yàn)證,至少根據(jù)同行評(píng)審的出版物。第三,采用上述樹脂和柱體積組合,分離方案應(yīng)盡可能簡(jiǎn)單,即使是實(shí)驗(yàn)室醫(yī)學(xué)培訓(xùn)不足的人員也可以操作。

本研究逐步解決了上述三個(gè)問題,如圖1所示。比較了所有三種瓊脂糖CL樹脂,即CL-2B、CL-4B和CL-6B的性能,然后進(jìn)行了柱體積優(yōu)化。在這些優(yōu)化的條件下,我們證明了2個(gè)批量洗脫步驟的二分式SEC分離足以從胎牛血清(FBS)、人血清(HS)和無(wú)FBS細(xì)胞培養(yǎng)上清中分離EV,具有高純度和顆;厥章。這種簡(jiǎn)化的EV分離方法具有潛在的用于臨床的優(yōu)勢(shì)。

材料和方法:

一、FBS

FBS(批次#:2014014)購(gòu)自BI,在室溫下300×g離心10min,在4?C下17000×g離心20min以清除碎片。上清液用0.22μmMinisart高流量PES注射器過濾器過濾,并在-80?C保存。

二、人血清(HS)

本研究采集的人類血液樣本已獲得暨南大學(xué)第一附屬醫(yī)院倫理委員會(huì)的批準(zhǔn)。包括4名健康捐贈(zèng)者(3名女性,1名男性,年齡24-32歲,正常飲食)。供體1的樣品用于評(píng)價(jià)不同樹脂和柱體積的性能,以及SEC和UC的蛋白質(zhì)組學(xué)比較。采用供體2-4的血清進(jìn)行二分法SEC方法的驗(yàn)證。對(duì)于每個(gè)捐贈(zèng)者,使用22號(hào)針和無(wú)添加劑的真空采血管從肘正中靜脈或基底靜脈抽取外周血。血樣在室溫下直立1-1.5h,以便凝血。然后按照上面描述的FBS的處理方法處理血樣。

三、SEC柱的填充和平衡

SEC柱在使用前一天進(jìn)行填充。瓊脂糖CL-2B、CL-4B或CL-6B樹脂通過輕輕翻轉(zhuǎn)2min以上徹底重懸。為了制備柱體積分別為10ml和20ml的SEC柱,分別將13.5ml和27ml樹脂分別裝入Econo-Pac色譜柱。準(zhǔn)備好柱,并在4?C下保持靜止過夜,使樹脂沉淀并達(dá)到每重力指定的柱體積。在EV分離之前,在柱的頂部添加了帶有Econo-Pac色譜柱的上層床支撐,以防止其被干擾或干燥。然后在進(jìn)行樣品加載前,用2倍的PBS(0.22μm過濾,以下同)平衡柱。收集從SEC柱中滴出的最后1mlPBS,用于檢測(cè)背景顆粒和蛋白質(zhì)。

四、用常規(guī)SEC分離EV

HS和FBS樣品在室溫下解凍,然后在4?C下以17000×g,10min離心,以去除凍融過程中產(chǎn)生的聚集體。然后將上清液裝入SEC柱中。將1ml的樣品裝載在平衡的SEC柱的頂部,以使其通過重力流完全滴出。分餾時(shí),每個(gè)餾分加入500μlPBS,并收集洗脫液。前500μlPBS洗脫的洗脫液計(jì)算為分?jǐn)?shù)1。10ml和20ml柱分別收集26和52個(gè)餾分。所有餾分均存儲(chǔ)在-80?C下,用于下游分析。

五、二分式SEC分離EV

在樣品(1ml)完全滴出柱之后,立即用不同組合的PBS進(jìn)行2次洗脫(7.5ml和18.5ml,8ml和818ml,8.5ml和17.5ml,9ml和17ml,或9.5ml和16.5ml)。樣品流和第一次批量洗脫的洗脫液作為洗脫液1。然后收集第二次批量洗脫液作為洗脫液2。洗脫液1和2分別使用具有30kDa分子量切斷(MWCO)膜的過濾器Amicon Ultra-4過濾器,通過5000×g和35?固定角轉(zhuǎn)子離心濃縮。

六、SEC柱的清洗和恢復(fù)

為了評(píng)估重復(fù)使用的柱的性能,我們按照GE醫(yī)療公司提供的瓊脂糖樹脂進(jìn)行了柱清洗和恢復(fù)。使用的SEC柱用2×柱體積的清洗液清洗,然后用2×柱體積的PBS洗滌進(jìn)行恢復(fù)。下次使用時(shí),應(yīng)用1×柱體積的PBS重新平衡。

七、納米顆粒跟蹤分析(NTA)

顆粒大小和濃度由NanoSight NS300分析儀確定,配備488nm藍(lán)色激光和sCMOS相機(jī)。樣品用PBS稀釋≥20倍,然后裝入儀器。對(duì)每個(gè)樣本,采集3個(gè)隨機(jī)視角的視頻,儀器參數(shù)設(shè)置如下:溫度控制器,on;溫度,25?C;攝像機(jī)水平,14;捕獲持續(xù)時(shí)間,60s。視頻采用以下參數(shù)進(jìn)行分析:粘度、水(0.89cP);檢測(cè)閾值,3。使用NanoSight NTA3.4軟件(Malvern)報(bào)告了從3個(gè)視頻中計(jì)算出的粒徑和平均濃度。

八、透射電子顯微鏡(TEM)

用等體積的4%的多聚甲醛固定從供體3的HS(w/v)中分離出的洗脫液1的20μl。10μl的固定樣品被一個(gè)formvar碳涂層的TEM網(wǎng)格吸收,然后再用1%(w/v)戊二醛固定。柵格用醛酸鈾酰溶液(4%醋酸鈾酰,0.0075M草酸,pH7)染色,并在甲基纖維素-ua(0.4%醋酸鈾酰,1.8%甲基纖維素)中干燥。最后,用TecnaiG2透射電子顯微鏡在100kV下觀察網(wǎng)格。

九、 蛋白[質(zhì)]印跡法

通過BCA蛋白測(cè)定法(Thermo)測(cè)定蛋白濃度。對(duì)于從常規(guī)SEC樣本中獲得的多個(gè)餾分的IB,采用兩種樣本加載策略。對(duì)于含有足夠蛋白質(zhì)的組分,裝載20μg蛋白。對(duì)于每32μl蛋白小于20μg的組分,使用32μl的樣品。所有樣品分別用PBS調(diào)整到體積為32μl,然后加入8μl的5×上樣緩沖液。煮沸10min后,將樣品裝入NuPAGE10%Bis-Tris凝膠(1.5mm×15孔,Thermo)中。在1×NuPAGEMOPSSDS運(yùn)行緩沖液(Thermo)中,在200V下進(jìn)行35min的電泳,然后在1×NuPAGE轉(zhuǎn)移緩沖液(Thermo)中,以20V常數(shù)下進(jìn)行PVDF膜(Thermo)轉(zhuǎn)移1小時(shí)。用5%的牛奶和含0.2%Tween的Tris緩沖鹽水(TBST)封閉膜,并與一抗在4?C下孵育過夜。一抗包括rabbit anti-apolipoprotein A-I/ApoA1 pAb、rabbit anti-integrin β3 mAb、rabbit anti-syntenin mAb、rabbit anti-TSG101 mAb、 rabbit anti-CD9 mAb、rabbit anti-CD63 mAb、rabbit anti-albumin mAb、 mouse anti-ApoB mAb。二抗染色時(shí),用TBST洗滌膜3次(每次5min),并與二抗在室溫下孵育1h。HRP偶聯(lián)的二抗包括抗兔IgG和抗小鼠IgG。最后,在用Clarity Western ECL Substrate孵育之前,用TBST洗滌膜3次(每次5min)。圖像拍攝是使用590nm濾光片的5200 Multi imager。

對(duì)于二分式SEC中洗脫1和洗脫2上的IB,考慮到目標(biāo)蛋白的豐度,分別裝載5、10、20或30μg蛋白/通道。采用考馬斯亮藍(lán)R-250染色分析,驗(yàn)證根據(jù)BCA結(jié)果計(jì)算出的相同量蛋白的負(fù)載。

十、SW620細(xì)胞培養(yǎng)上清液的二分式SEC實(shí)驗(yàn)

SW620細(xì)胞在cDMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),包含10%胎牛血清、1mM丙酮酸鈉、1%青霉素/鏈霉素和10μg/ml環(huán)丙沙星。為了制備用于EV分析的上清液,將SW620細(xì)胞接種于1.5×10^7個(gè)細(xì)胞/燒瓶中,培養(yǎng)48h。用PBS在瓶中洗滌2次,用DMEM沖洗,然后在10mlDMEM中培養(yǎng)24h,讓EV分泌。然后收集上清,用GL-21M離心機(jī)在220×g10min和15000×g離心30min,分別去除細(xì)胞和碎片。用0.22μm過濾器過濾后,使用30kDa MWCO超濾(UF)裝置將上清液濃縮至~1ml。制備21個(gè)含~210ml上清液的燒瓶,用于EV實(shí)驗(yàn),包括顆粒和蛋白濃度、IB和EV純度的測(cè)定。

十一、SW620細(xì)胞的熒光標(biāo)記

在熒光標(biāo)記實(shí)驗(yàn)中,8個(gè)75cm2燒瓶的貼壁細(xì)胞用PBS洗滌兩次。最后在PBS中加入濃度為5μM5(6)-羧基熒光素-N-琥珀酰亞胺酯(CFDA-SE),每1×10^7細(xì)胞/1ml。對(duì)于未標(biāo)記的組(8個(gè)燒瓶),使用PBS模擬CFDA-SE標(biāo)記。然后將燒瓶在37?C下孵育10min。然后加入5×體積的cDMEM終止染色。用PBS在瓶中洗滌2次,用DMEM沖洗,然后在10mlDMEM中培養(yǎng)24h,使EV分泌。然后用上述相同的程序制備用于EV分析的上清液。

十二、nFCM分析

采用nFCM(NanoFCM)分析,評(píng)估顆粒大小、熒光強(qiáng)度和EV純度。由于EV將被TritonX-100裂解,EV純度可以通過TritonX-100破壞粒子占總粒子的比例間接反映。采用含有68nm、91nm、113nm和155nm二氧化硅球的混合物(S16M-Exo,NanoFCM)作為粒徑標(biāo)準(zhǔn)品。將SW620 EV與TritonX-100混合,最終濃度為1%(v/v),并在冰上放置1h。然后將稀釋后的樣品與等量的1%(v/v)FITC標(biāo)記的作為計(jì)數(shù)標(biāo)準(zhǔn)的250nm二氧化硅納米球混合。nFCM分析的儀器參數(shù)設(shè)置如下:激光,10mW,488nm;SS衰減,10%;采樣壓力,0.8kPa;采樣周期,100μs;記錄時(shí)間,1min。

十三、熒光測(cè)量

對(duì)CFDA-SE標(biāo)記和未標(biāo)記的SW620細(xì)胞的培養(yǎng)上清液進(jìn)行二分式SEC檢測(cè)。洗脫液1和洗脫液2分別通過UF濃縮至100μl。將70μl的濃縮洗脫液1或洗脫液2裝入96孔板中。熒光強(qiáng)度(FI)使用Victor X5 multilabel plate reader(PerkinElmer)進(jìn)行測(cè)量。樣品用488nm激光激發(fā),發(fā)射光通過535/25nm帶通濾光片記錄。

十四、EV的蛋白質(zhì)組學(xué)分析

無(wú)血小板血漿(PFP)、超速離心沉淀(UF)、蛋白質(zhì)提取物、蛋白消化、數(shù)據(jù)獨(dú)立采集質(zhì)譜法(DIA-MS)、數(shù)據(jù)庫(kù)搜索和蛋白質(zhì)定量,內(nèi)容略。

十五、基因本體分析

十六、數(shù)據(jù)分析和統(tǒng)計(jì)

結(jié)果就展示這么多,有興趣的話可以自己找這篇文獻(xiàn)具體看,有理解得不對(duì)的地方,歡迎專業(yè)人士指正,一起交流~

參考文獻(xiàn):

[1]Guo, J; Wu, C; Lin, X; et al.Establishment of a simplified dichotomic size-exclusion chromatography for isolating extracellular vesicles toward clinical applications.[J].J Extracell Vesicles.2021,10(11):e12145

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37樓: Originally posted by NanoFCMlxq at 2022-02-13 17:12:40
你們是什么方法純化?
...

磁珠型,操作簡(jiǎn)單,外泌體濃度高,2個(gè)小時(shí)就能完成純化。

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38樓2022-02-14 10:59:44
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