求助,畢赤酵母系統(tǒng)表達(dá)阿魏酸酯酶,蛋白沒有活性,可能哪些問題,該怎么解決現(xiàn)狀?
本人初入分子生物,用PPIZCA質(zhì)粒重組了阿魏酸酯酶的基因序列,然后我把重組質(zhì)粒導(dǎo)入畢赤酵母中。結(jié)果是,PCR和測(cè)序驗(yàn)證基因大小和序列沒問題,western blot也做了能看到所在處清晰的條帶,但是有一次出現(xiàn)了包涵體,這一次沒有,我用這一次的粗酶液和提純的蛋白測(cè)試酶活性,結(jié)果一點(diǎn)活性沒有。請(qǐng)教大佬幫我分析一下可能的原因和解決辦法。
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京公網(wǎng)安備 11010802022153號(hào)
首先,可溶不一定是結(jié)構(gòu)正確的單體,也可能是可溶性多聚體,這是很常見的。你的蛋白出現(xiàn)過包涵體,說明蛋白容易聚集,你首先要想辦法搞清楚是什么原因?qū)е碌。我看了幾種不同的序列,預(yù)測(cè)分析發(fā)現(xiàn)它們的共同特征是本身較穩(wěn)定,熱穩(wěn)定性也比較好,但含有較多的Cys。盡管酵母能輔助二硫鍵形成,但多Cys正確配對(duì)還是有一定困難的(雖然不知道你具體是哪個(gè)序列)。所以,我個(gè)人認(rèn)為聚集可能主要是由于分子內(nèi)以及分子間的二硫鍵錯(cuò)配造成的。建議破菌純化后做還原非還原電泳比較,看一下非還原電泳是否存在大量二聚、三聚等多聚體。如果是這種情況,要么優(yōu)化表達(dá),要么對(duì)樣品復(fù)性,比如破菌加還原劑,直接還原純化,純化后稀釋蛋白,在較低的濃度下低溫透析緩慢去除還原劑讓其逐漸氧化,也可以添加GSH、GSSG來輔助體外二硫鍵的形成。如果有分子篩,可以把純化的樣品還原處理以后再跑一下柱子(buffer帶鹽),看一下還原以后是否存在多聚體,如果有明顯聚集體,說明存在較明顯的疏水聚集。這時(shí)候就需要用尿素或鹽酸胍對(duì)樣品變性并還原處理,然后再嘗試復(fù)性。
另外,超聲一般建議冰浴超2s停3s,超10s容易導(dǎo)致過熱引發(fā)蛋白變性聚集,功率根據(jù)體積來決定,看一下儀器的說明書,
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