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[交流]
淋巴細胞的分離和激化實驗
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一、實驗試劑 1. PBS(Dulbecco): 0.10 g/L 無水CaCl2 0.20 g/L KCl 0.20 g/L KHPO4 0.10 g/L MgCl2.6H2O 8.00 g/L NaCl 2.16 g/L NaH2PO4.7H2O 調(diào)pH至7.4 2. 生長培養(yǎng)基: 不含谷氨酰胺的RPMI 1640培養(yǎng)基 10% FBS 慶大霉素(可不用)(10 μg/ml) 2 mmol/L L-谷氨酰胺 1 mmol/L 丙酮酸鈉 3. 促細胞分裂劑(終濃度) 5μg/ml PHA:1 mg/ml母液-20℃分裝凍存 25 μg/ml 刀豆凝集素A(conA):0.4 mg/ml母液-20℃分裝凍存 商陸促分裂原:再水華母液-20℃分裝凍存 二、實驗步驟 1. 收集10 ml全血,加入不含防腐劑的肝素(0.2 ml肝素/10 ml全血)。實驗全過程保持無菌操作。 2. 在15 ml離心管中的肝素化血中加入1 ml 6%葡萄糖,室溫放置20~30 min,沉降紅細胞。沉降時間不宜過長,否則單核細胞將不再保留在富含白細胞的血漿。 3. 從葡聚糖處理的血中小心收集紅細胞上層的富含白細胞的血漿。 4. 富含白細胞的血漿室溫300 g離心8 min,沉淀細胞。 5. 棄上清,細胞輕懸于1 ml PBS中。 6. 于室溫下,用無菌巴斯德吸管小心將細胞懸液加在5ml Ficoll-Hypaque之上。此步操作要技術熟練,才能保持血漿曾在Ficoll-Hypaque層之間界面清晰。 7. 400 g低溫(4℃)離心30 min,沉淀細胞。離心后切記不要破壞管中的分層。 8. 淋巴細胞在血漿和Ficoll-Hypaque層之間的白色渾濁條帶中,小心取出貯存,棄紅細胞沉淀。 9. 5 ml PBS洗一次細胞,室溫250 g離心5 min,沉淀細胞懸于3~5 ml生長培養(yǎng)基中。 10. 全部細胞懸液轉(zhuǎn)移至T25組織培養(yǎng)瓶,加促細胞分裂劑。 |
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