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植物原生質(zhì)體
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我最近在提取原生質(zhì)體,我做的是小麥的,我試了2個(gè)方案 方案一: 試劑: (1)酶液 1%纖維素酶 1%果膠酶 0.7mol/L(12.7519g溶于100mL)甘露醇 0.7mmol/L(0.00952g溶于100mL)KH2PO4 10mmol/L(0.14698g溶于100mL)CaCl2•2H2O pH6.8—7.0 (2)13%CPW洗液 27.2 mg/L KH2PO4 101.0 mg/L KNO3 1480.0 mg/L CaCl2•2H2O 246.0 mg/L MgSO4 0.16 mg/L KI 0.025 mg/L CuSO4 13% W/V甘露醇 pH 6.0 (3)20%蔗糖溶液 步驟: 取無菌葉,切成薄片后,置于酶液中和搖床上(60~70rpm),在25~28℃黑暗條件下,酶解5~7h。 用200目網(wǎng)過濾除去未完全消化的殘?jiān)T?000rpm條件下離心5分鐘,棄上清。 加入3~ 4ml l3%CPW洗液,相同條件下離心2-5分鐘,棄上清,留1ml洗液。 用滴管將混有原生質(zhì)體的1ml洗液吸也,輕輕鋪于20%蔗糖溶液上(5ml離心管裝3m120%蔗糖溶液),在1000rpm條件下離心5—10分鐘,由于密度梯度離心的作用,生活力強(qiáng)狀態(tài)好的原生質(zhì)體漂浮在20%的蔗糖與13% CPW之間,破碎的細(xì)胞殘?jiān)寥牍艿住?br /> 用200μl移液器輕輕將狀態(tài)好的原生質(zhì)體吸出(注意盡可能不要吸入下層的蔗糖溶液),放入另一干凈的離心管中.加4ml l3%CPW洗液,1000rpm離心2-5分鐘,棄上清. 用血球計(jì)數(shù)板調(diào)整原生質(zhì)體密度為105一106/ml之間。 方案二: 試劑: (1)酶:洗液+1.5%纖維素酶Onozyka RS+0.3%果膠酶Y-23,調(diào)PH為5.7-5.8然后以0.22μm微孔濾膜抽濾滅菌; 洗液:10.92g甘露醇+55.sgCaC12+looml水,pH5.7-5.8,高壓蒸汽滅菌 步驟: ①取葉片剁碎以后,分別經(jīng)含有纖維素酶(1%w/v)和果膠酶 (0.3%w/v)的混合酶液處理3-4h,新游離出的原生質(zhì)體圓、透明、內(nèi)含物較多; ②用置于9cm培養(yǎng)皿中,經(jīng)300μm不銹鋼網(wǎng)過濾酶解產(chǎn)物,過濾下的原生質(zhì)體和酶混合液轉(zhuǎn)入5ml離心管中,用洗液沖洗濾網(wǎng)兩次,將液體轉(zhuǎn)入另一離心管中 ③500rpm離心5min,收集原生質(zhì)體,小心吸出上清(酶液),回收備用,不要觸動(dòng)原生質(zhì)體 ④加入PBS緩沖液至離心管中,用吸管將沉淀全部吹起,形成均勻懸液,500rpm離心5min,小心吸出上清(PBS緩沖液),收集原生質(zhì)體 ⑤重復(fù)步驟④2-3次,以去掉殘留的酶液 ⑥離心管中加入PBS緩沖液,制成濃度105個(gè)/ml的均勻懸液 問題:1.酶液怎么配比較好呢?看這兩個(gè)方案中配的不大一致,哪個(gè)好?酶的用量多少合適?酶解的時(shí)間多久合適?還有洗液要求高嗎?兩個(gè)方案也差好多,而且第一個(gè)方案的洗液配起來超麻煩。 2.下面這個(gè)問題比較困惑,就是方案一需要20%蔗糖,方案二不需要,蔗糖說是用來提取活力高的原生質(zhì)體,但是我用方案一的時(shí)候,分層不大明顯,我把上面的說是帶有高活性原生質(zhì)體的液體洗出來時(shí)感覺跟吸水差不多,然后就把最底層的離心出來的沉淀扔了(按方案一的說法這些沉淀都是死細(xì)胞或者破碎細(xì)胞),第二個(gè)方案我卻直接用的離心完的沉淀,也就是說我取的都是死細(xì)胞?但是人家用方案二的人卻做出來了呀。 3.離心時(shí)這個(gè)轉(zhuǎn)速的問題。。。500、1000rpm,感覺有點(diǎn)小啊,有時(shí)離心完感覺沉淀還不明顯呢,稍微一動(dòng)就渾濁了。。。 以上就是我的眾多疑問。。。有點(diǎn)多。。。沒辦法。。。斷斷續(xù)續(xù)的做了好幾個(gè)月了眼看馬上就要開始做試驗(yàn)了還做不出來,我沒人可問,實(shí)驗(yàn)室?guī)煾鐜熃愣际亲鲷~做蚯蚓的。。。。我第一個(gè)做植物的問他們也不明白。。。還是來這里問問,希望有經(jīng)驗(yàn)的懂點(diǎn)的都來說兩句,會(huì)哪個(gè)問題就說哪個(gè)就行,謝謝。! |

禁言 (文學(xué)泰斗)
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1、有一種煤叫做崩潰酶,蝸牛酶,做原生質(zhì)體不錯(cuò)。 2、原生質(zhì)體提起出來之后,還需要再生細(xì)胞壁,需要專門的培養(yǎng)基。 3、高滲溶液一般用PEG配置,用蔗糖的不多。 4、葉片不能太老,酶解時(shí)間很重要。 5、過濾可以用顯微鏡的擦鏡紙、漏斗分離(上述東西都要滅菌) |
專家顧問 (職業(yè)作家)
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專家經(jīng)驗(yàn): +426 |
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1 文獻(xiàn)不可不信不可盡信,尤其是中文文獻(xiàn)。具體應(yīng)該用什么樣的酶液,這需要你自己摸索。植物材料狀態(tài),你的操作,試劑等等影響很大,樓主不妨把兩種酶液都試試,尋找效果最好的組合。 2 第一種方法重點(diǎn)在于梯度離心分離狀態(tài)最好的原生質(zhì)體,第二種則希望盡可能收集所有細(xì)胞,各有利弊。如果你酶解后細(xì)胞情況較好,可以考慮第一種方法,如果大量細(xì)胞在酶解后破碎死亡,用第二種。 3 原生質(zhì)體非常脆弱,一點(diǎn)點(diǎn)機(jī)械損傷就可能殺死它們,500-1000 rpm很正常,要避免再懸浮,操作小心一點(diǎn)。 樓上蟲友的回答有一點(diǎn)答非所問,但談到的確實(shí)是幾個(gè)做原生質(zhì)體的要點(diǎn),非常值得參考 |

木蟲 (著名寫手)

專家顧問 (職業(yè)作家)
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