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兀自傷新蟲 (初入文壇)
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[求助]
蛋白膠
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本人新手一枚,最近配蛋白膠總是出現(xiàn)一些問題,如圖,膠中出現(xiàn)氣泡,最常見的是濃縮膠和分離膠之間出現(xiàn)氣泡。剛剛配出來沒有,往往是在4度放一天后就有了。請高手多多指教,謝謝! IMAG0030.jpg IMAG0032.jpg |
金蟲 (文壇精英)
宮創(chuàng)始人 ------小妮
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是按照這個方法做的嗎 (1)10%AP(W/V)::過硫酸銨(AP,引發(fā)劑) 0.1g,加蒸餾水至1.0mL,最好臨時配制。 (2)電泳樣品緩沖液:SDS 0.4g,巰基乙醇 1.0ml, 甘油 2.0ml, 0.5mol/L Tris-HCl (pH6.8) 2.0 ml, 0.1%(W/V)溴酚藍 0.5ml,ddH2O 2.5ml。 (3)30.8%凝膠貯存液:稱Acr 30g及Bis 0.8g,溶于蒸餾水中,最后定容至100ml,過濾后置于棕色試劑瓶中,4°C貯存。 (4) 凝膠緩沖液 分離膠緩沖液:1.5mol/L pH 8.8 Tris-HCl。稱取18.15gTris,用60ml重蒸水溶解,再用1mol/L的HCl調(diào)節(jié)至pH8.8,定容至100ml,4°C保存。 濃縮膠緩沖液:0.5mol/L pH6.8 Tris-HCl。稱取6g Tris,用60ml重蒸水溶解,再用1mol/L的HCl調(diào)節(jié)至pH6.8, 定容至100ml,4°C保存。 (5)10%SDS:將10g SDS溶于80ml蒸餾水中并輕緩攪拌(室溫低時需水浴加入溶解)。 (6)電極緩沖液(內(nèi)含0.1%SDS, 0.05mol/L Tris-0.384mol/L 甘氨酸緩沖液,pH8.3):稱 Tris 3.03g, 甘氨酸14.41g,SDS 1g,加蒸餾水使其溶解后定容至1000ml。 (7) 固定液:取50%甲醇455ml。冰乙酸45ml混勻。 (8)染色液:稱考馬斯亮藍R250 0.125g, 加上述固定液250ml,過濾后使用。 (9)脫色液:冰乙酸75ml,甲醇50ml,加蒸餾水定容至1000ml。也可用250ml 95%乙醇,80ml冰乙酸,加ddH2O至1L。 (10)95%乙醇。 (1)配膠 貯備膠 (12.5%) 分離膠 (10%) 濃縮膠(4%) ddH2O 3.4ml 4.2ml 3.1ml Buffer 2.5ml 2.5ml 1.25ml Acr+Bis(30.8%) 4ml 3.2ml 0.7ml 10%SDS 100ul 100ul 50ul TEMED 6ul 6ul 4ul AP 100ul 100ul 50ul |

銅蟲 (小有名氣)
新蟲 (初入文壇)
銅蟲 (小有名氣)
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跟你溶液配制比較下,只有濃縮膠濃度有點區(qū)別(我們是1.0mol/L),這應該沒有啥大問題,其他都是差不多的。目測你圖片,問題還是在分離膠上,這里注意幾點:玻璃板一定要清洗干凈,確保無粘附,自然晾干,(可以用酒精擦拭);SDS配制時要充分溶劑,制膠時SDS溶液沿玻璃壁流下,充分混合;注意AP的現(xiàn)配現(xiàn)用和TEMED的加入次序。 我把我們實驗室的情況簡述下,以便你參考:室溫下澆灌分離膠后,用水或異丙醇壓膠30min左右,后罐濃縮膠,室溫放置1~2h開始點樣點樣;另外是晚上10點左右制膠,方法同上,最后室溫放置過夜,第二天早晨開始點樣電泳。 實在不行,建議參考下《蛋白質(zhì)電泳技術(shù)》相關教材,真誠祝你成功!自己的微薄之力,錯誤之處請勿吐槽! |
銀蟲 (小有名氣)
金蟲 (小有名氣)

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