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北京石油化工學(xué)院2026年研究生招生接收調(diào)劑公告
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昝婷婷

金蟲 (小有名氣)

JANE

[求助] 跑膠應(yīng)用電場強(qiáng)度是1v/cm,請問這個具體是什么意思,換算成恒壓多少? 已有3人參與

如題:本人初次跑膠,閱讀瓊脂糖凝膠電泳文獻(xiàn)時,文獻(xiàn)說明跑膠應(yīng)用電場強(qiáng)度是1v/cm,請問這個具體是什么意思,換算成恒壓多少?
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昝婷婷

金蟲 (小有名氣)

JANE

引用回帖:
2樓: Originally posted by 九字江山 at 2015-03-16 10:34:15
是指電源電壓/電極間距離,電場強(qiáng)度是指單位長度(cm)的電位降,即
電勢梯度。
如以濾紙作支持物,其兩端浸入到電極液
中,電極液與濾紙交界面的紙長為20cm,
測得的電位降為200V,電場強(qiáng)度為
200V/20cm=10V ...

那么你的意思是指如果我的膠長度為5CM,則跑膠時所應(yīng)該用的是恒壓5v*1v/cm=5v嗎?
3樓2015-03-16 11:10:39
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九字江山

銀蟲 (小有名氣)


【答案】應(yīng)助回帖

★ ★
感謝參與,應(yīng)助指數(shù) +1
昝婷婷: 金幣+2 2015-03-16 11:40:10
是指電源電壓/電極間距離,電場強(qiáng)度是指單位長度(cm)的電位降,即
電勢梯度。
如以濾紙作支持物,其兩端浸入到電極液
中,電極液與濾紙交界面的紙長為20cm,
測得的電位降為200V,電場強(qiáng)度為
200V/20cm=10V/cm。
附文獻(xiàn)一則:
一、瓊脂糖凝膠的特點(diǎn)
    天然瓊脂(agar)是一種多聚糖,主要由瓊脂糖(agarose,約占80%)及瓊脂膠(agaropectin)組成。瓊脂糖是由半乳糖及其衍生物構(gòu)成的中性物質(zhì),不帶電荷,而瓊脂膠是一種含硫酸根和羧基的強(qiáng)酸性多糖,由于這些基團(tuán)帶有電荷,在電場作用下能產(chǎn)生較強(qiáng)的電滲現(xiàn)象,加之硫酸根可與某些表達(dá)蛋白質(zhì)作用而影響電泳速度及分離效果。因此,目前多用瓊脂糖為電泳支持物進(jìn)行平板電泳,其優(yōu)點(diǎn)如下。
(1)瓊脂糖凝膠電泳操作簡單,電泳速度快,樣品不需事先處理就可以進(jìn)行電泳。
(2)瓊脂糖凝膠結(jié)構(gòu)均勻,含水量大(約占98%~99%),近似自由電泳,樣品擴(kuò)散較自由電流,對樣品吸附極微,因此電泳圖譜清晰,分辨率高,重復(fù)性好。
(3)瓊脂糖透明無紫外吸收,電泳過程和結(jié)果可直接用紫外光燈檢測及定量測定。
(4)電泳后區(qū)帶易染色,樣品極易洗脫,便于定量測定。制成干膜可長期保存。
    目前,常用瓊脂糖作為電泳支持物,分離蛋白質(zhì)和同工酶。將瓊脂糖電泳與免疫化學(xué)相結(jié)合,發(fā)展成免疫電泳技術(shù),能鑒別其他方法不能鑒別的復(fù)雜體系,由于建立了超微量技術(shù),0.1ug蛋白質(zhì)就可檢出。
    瓊脂糖凝膠電泳也常用于分離、鑒定核酸,如DNA鑒定,DNA限制性內(nèi)切核酸酶圖譜制作等。由于這種方法操作方便,設(shè)備簡單,需樣品量少,分辨能力高,已成為基因工程研究中常用實(shí)驗(yàn)方法之一。

二、DNA的瓊脂糖凝膠電泳
    瓊脂糖凝膠電泳對核酸的分離作用主要是依據(jù)它們的相對分子量質(zhì)量及分子構(gòu)型,同時與凝膠的濃度也有密切關(guān)系。
1、核酸分子大小與瓊脂糖濃度的關(guān)系
(1)DNA分子的大小 在凝膠中,DNA片段遷移距離(遷移率)與堿基對的對數(shù)成反比,因此通過已知大小的標(biāo)準(zhǔn)物移動的距離與未知片段的移動距離時行比較,便可測出未知片段的大小。但是當(dāng)DNA分子大小超過20kb時,普通瓊脂糖凝膠就很難將它們分開。此時電泳的遷移率不再依賴于分子大小,因此,就用瓊脂糖凝膠電泳分離DNA時,分子大小不宜超過此值。
(2)瓊脂脂糖的濃度 如下表所示,不同大小的DNA需要用不同濃度的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分離。

        表 瓊脂糖濃度與DNA分離范圍
瓊脂糖濃度 /%    0.3    0.6    0.7    0.9    1.2    1.5    2.0
線狀DNA大小/kb  60-5  20-1  10-0.8  7-0.5  6-0.4  4-0.2  3-0.1

2、核酸構(gòu)型與瓊脂糖凝膠電泳分離的關(guān)系
    不同構(gòu)型DNA的移動速度次序?yàn)椋汗﹥r閉環(huán)DNA(covalently closed circular,cccDNA)>直線DNA>開環(huán)的雙鏈環(huán)狀DNA。當(dāng)瓊脂糖濃度太高時,環(huán)狀DNA(一般為球形)不能進(jìn)入膠中,相對遷移率為0(Rm=0),而同等大小的直線雙鏈DNA(剛性棒狀)則可以長軸方向前進(jìn)(Rm>0),由此可見,這三種構(gòu)型的相對遷移率主要取決于凝膠濃度,但同時,也受到電流強(qiáng)度、緩沖液離子強(qiáng)度等的影響。
3、電泳方法
(1)凝膠類型
    用于分離核酸的瓊脂糖凝膠電泳可分為垂直型及水平型(平板型)。水平型電泳時,凝膠板完全浸泡在電極緩沖液下1-2mm,故又稱為潛水式。目前更多用的是后者,因?yàn)樗颇z和加樣比較方便,電泳槽簡單,易于制作,又可以根據(jù)需要制備不同規(guī)格的凝膠板,節(jié)約凝膠,因而較受歡迎。
(2)緩沖液系統(tǒng)
    缺少離子時,電流太小,DNA遷移慢;相反,高離子強(qiáng)度的緩沖液由于電流太大會大量產(chǎn)熱,嚴(yán)重時,會造成膠熔化和DNA的變性。
常用的電泳緩沖液有EDTA(pH8.0)和Tris-乙酸(TEA),Tris-硼酸(TBE)或Tris-磷酸(TPE)等,濃度約為50mmol/L(pH7.5~7.8)。電泳緩沖液一般都配制成濃的貯備液,臨用時稀釋到所需倍數(shù)。
TAE緩沖能力較低,后兩者有足夠高的緩沖能力,因此更常用。TBE濃溶液長期貯存會出現(xiàn)沉淀,為避免此缺點(diǎn),室溫下貯存5×溶液,用時稀釋10倍0.5×工作溶液即能提供足夠緩沖能力。
(3)凝膠的制備
    以稀釋的電極緩沖液為溶劑,用沸水浴或微波爐配制一定濃度的溶膠,灌入水平膠框或垂直膠膜,插入梳子,自然冷卻。
(4)樣品配制與加樣
    DNA樣品用適量Tris-EDTA緩沖液溶解,緩沖液內(nèi)含有0.25%溴酚藍(lán)或其他指示染料,含有10%-15%蔗糖或5%~10%甘油,以增加其比重,使樣品集中。為避免蔗糖或甘油可能使電泳結(jié)果產(chǎn)生U形條帶,可改用2.5%Ficoll(聚蔗糖)代替蔗糖或甘油。
(5)電泳
    瓊脂糖凝膠分離大分子DNA實(shí)驗(yàn)條件的研究結(jié)果表明,在低濃度、低電壓下,分離效果較好。在低電壓條件下,線性DNA分子的電泳遷移率與所用的電壓呈正比。但是,在電場強(qiáng)度增加時,較大的DNA片段遷移率的增加相對較小。因此隨著電壓的增高,電泳分辨率反而下降,為了獲得電泳分離DNA片段的最大分辨率,電場強(qiáng)度不宜高于5V/cm。
    電泳系統(tǒng)的溫度對于DNA在瓊脂糖凝膠中的電泳行為沒有顯著的影響。通常在室溫下進(jìn)行電泳,只有當(dāng)凝膠濃度低于0.5%時,為增加凝膠硬度,可在4℃進(jìn)行電泳。
(6)染色和拍照
    常用熒光染料溴乙錠(EB)染色,在紫外光下觀察DNA條帶,用紫外分析儀拍照,或用凝膠成像系統(tǒng)輸出照片,并進(jìn)行有關(guān)的數(shù)據(jù)分析。

三、印跡轉(zhuǎn)移電泳
    生物化學(xué)與分子生物學(xué)的研究工作經(jīng)常需要對電泳分離后的DNA進(jìn)行分子雜交,但瓊脂糖不適合于進(jìn)行雜交操作,1975年,Southren創(chuàng)造了將DNA區(qū)帶原位轉(zhuǎn)移到硝酸基纖維素膜(NC膜)上,再進(jìn)行雜交的方法,被稱為Southren印跡法。隨后,Alwine等將類似方法用于RNA印跡,被戲稱為Northern印跡,1979年Towbin等設(shè)計(jì)了將蛋白質(zhì)從凝膠轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜的裝置,將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到膜上,再與相應(yīng)的抗體等配體反應(yīng),被戲稱為Western印跡,這種裝置將膜和凝膠、濾紙等制成夾心餅干狀,用低電壓高電流電泳完成轉(zhuǎn)移。1982年Reinhart等用電轉(zhuǎn)移法將等電聚焦后的蛋白質(zhì)區(qū)帶從凝膠轉(zhuǎn)移到特定膜上,稱Eastern印跡。
目前國內(nèi)外有多種核酸、蛋白質(zhì)印跡轉(zhuǎn)移的電泳裝置出售,使印跡轉(zhuǎn)移速度快效率高、重復(fù)性好,應(yīng)用更加廣泛。聚丙烯酰胺凝膠也可用于印跡轉(zhuǎn)移電泳,但轉(zhuǎn)移蛋白質(zhì)時,凝膠中不可含有SDS、尿素等變性劑。用于轉(zhuǎn)移電泳的支持膜亦有多種選擇,近些年用尼龍膜較多,因?yàn)槟猃埬C(jī)械性能好,烘烤不變脆,使用時比硝酸纖維素膜更方便。
    進(jìn)行印跡轉(zhuǎn)移電泳時,要注意緩沖液的離子強(qiáng)度要低,pH要遠(yuǎn)離pI,使蛋白質(zhì)帶有較多電荷,一般用穩(wěn)定性較好的Tris-緩沖體系。還要注意凝膠與支持膜之間有能有氣泡。適當(dāng)提高電壓或電流可以提高轉(zhuǎn)移速度,但亦會增加熱效應(yīng),故電壓或電流不可過高。

四、交變脈沖電場凝膠電泳
    一般瓊脂糖凝膠電泳只能分離小于20kb的DNA。這是因?yàn)樵诃傊悄z中,DNA分子的有效直徑超過凝膠孔徑時,在電場作用下,迫使DNA變形擠過篩孔,而沿著泳動方向伸直,因而分子大小對遷移率影響不大。如此時改變電場方向,則DNA分子必須改變其構(gòu)象,沿新的泳動方面伸直,而轉(zhuǎn)向時間與DNA分子大小關(guān)系極為密切。1983年Schwartz等人根據(jù)DNA分子彈性弛豫時間(外推為0的滯留時間)與DNA分子大小有關(guān)的特性,設(shè)計(jì)了脈沖電場梯度凝膠,交替采用兩個垂直方向的不均勻電場,使DNA分子在凝膠中不斷改變方向,從而使DNA按分子大小分開。后來Carle等改進(jìn)了電泳技術(shù),并發(fā)現(xiàn)周期性的反轉(zhuǎn)換電場(periodic inversion of the electric field)亦能使大分子DNA通過電泳分開。電泳系統(tǒng)是由一水平式電泳槽和兩組獨(dú)立、彼此垂直的電極組成,一組電極負(fù)極為N,正極為S;另一組負(fù)極為W,正極為E。一塊正方形瓊脂糖凝膠板(10cm*10cm或20cm*20cm)呈45度放中央。電場在N-S和W-E之間交替建立。電場交替改變的時間長短與欲分離的DNA分子大小有關(guān)。電泳時,DNA分子處在連續(xù)間隔交替的電場中。首先向S極移動,然后改向E極。在每次電場方向改變時,DNA分子就要有一定的時間松弛,改變形狀和遷移方向。只有當(dāng)DNA分子達(dá)到一定構(gòu)型后,才能繼續(xù)前時。DNA分子凈移動方向與加樣線垂直,使樣品中各組分沿同一泳道形成各自的區(qū)帶。交變脈沖電泳可有效分離數(shù)百萬堿基對的大分子DNA。較新式的儀器電極間的角度和脈沖時間均可調(diào),使用更加方便。
    此外,瓊脂糖平板常用于免疫擴(kuò)散技術(shù)的電泳技術(shù)相結(jié)合的多種免疫電泳。
2樓2015-03-16 10:34:15
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781055707

木蟲 (著名寫手)

【答案】應(yīng)助回帖

★ ★
感謝參與,應(yīng)助指數(shù) +1
昝婷婷: 金幣+2, 你這意思是指不管我膠長多少,1v/cm對應(yīng)的就是120V的恒壓嗎?我的文獻(xiàn)里面說是要跑12h呢,怎么回事? 2015-03-16 11:41:44
120V跑20MIN,讓MARK跑到膠的3分之2處就可以了。
采菊東籬下,悠然見南山。
4樓2015-03-16 11:19:40
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781055707

木蟲 (著名寫手)

引用回帖:
4樓: Originally posted by 781055707 at 2015-03-16 11:19:40
120V跑20MIN,讓MARK跑到膠的3分之2處就可以了。

那是理論,我一直用1Ⅹ  TBE,120V跑20MIN,讓MARK跑到膠的3分之2處。跑12h,它可能是說10V電壓吧。要真跑12h小時,那還不被領(lǐng)導(dǎo)罵死。
采菊東籬下,悠然見南山。
5樓2015-03-16 12:27:27
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