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北京石油化工學(xué)院2026年研究生招生接收調(diào)劑公告
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【答案】應(yīng)助回帖

感謝參與，應(yīng)助指數(shù) +1
我們一般都用牛皮紙折的。你不會(huì)折就用膠水粘。真的，沒逗你玩。完整都撕掉的嘛
4樓2015-08-30 18:58:12
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【答案】應(yīng)助回帖

感謝參與，應(yīng)助指數(shù) +1
石蠟切片基本步驟之一器材和試劑

一、準(zhǔn)備工作（一）
（一）洗滌實(shí)驗(yàn)所需器皿：（玻璃器皿的清洗）
1、用洗衣粉將玻璃器皿表里擦洗干凈反復(fù)洗刷
2、將器皿在自來水下沖洗干凈
3、將器皿倒扣在鋪有吸水紙或紗布的桌子上控干
注：一般情況下，經(jīng)以上步驟后，用蒸餾水洗過1~3次即可烘干備用，如果做特殊染色還需浸泡在酸性清潔液內(nèi)12~24小時(shí)，再經(jīng)自來水徹底沖洗，再用蒸餾水過洗1~3次烘干備用。
（二）配制：硫酸洗液的配制
（三）載玻片與蓋玻片的處理
1. 將所需載玻片與蓋玻片清洗后，放入硫酸重鉻酸鉀溶液中浸泡24小時(shí)
2. 流水沖洗，再用蒸餾水沖洗3遍
3. 95%~100%酒精浸泡24小時(shí)，用綢布擦干備用
注：在將載玻片與蓋玻片放入清潔液中時(shí)，要一片片地投入，使其不致重疊。
二、準(zhǔn)備工作（二）常用液體的配制
（一）緩沖溶液：
1．磷酸鹽緩沖液
A液：0.1mol/L磷酸二氫鈉
B液：0.1mol/L磷酸氫二鈉
A液與B液按比例混合調(diào)整到所需的PH值（3：7&asympH7.0）
2．枸椽酸緩沖溶液
A液：0.1mol/L枸椽酸
B液：0.1mol/L枸椽酸鈉
A液與B液按比例混合調(diào)整到所需的PH值（6.2：42.8&asympH6.2）
（二）固定劑：
1．甲醛：10%甲醛
福爾馬林 100ml; 蒸餾水 900ml
注：實(shí)際甲醛含量只有3.6~4.0%但習(xí)慣上都將其視為10%。
2．10％中性福爾馬林鈣固定液
甲醛液 10ml ;蒸餾水 90ml
加碳酸鈣至過飽和(以容器底部碳酸鈣沉淀1~50px厚為適度)充分振蕩混合后，放置24小時(shí)取上清液使用。
3．4%多聚甲醛：
8%多聚甲醛: 多聚甲醛 8g;蒸餾水 100ml
加溫至60℃左右，不時(shí)攪拌，成為乳白色溶液。滴加1N NaOH，并不停攪動(dòng)至液體清明。
1N NaOH
lN等于1L溶液中某種物質(zhì)1mol除以該物質(zhì)的氫當(dāng)量價(jià)所得數(shù)值的量
氧化鈉(NaOH )；分子量＝40．005，當(dāng)量價(jià)＝1
1N Na0H的配制方法為：m＝40．005／1＝40．005g。取40．005gNaOH溶解于1L蒸餾水中
4%多聚甲醛 ;8%多聚甲醛 50ml
0.1M磷酸鹽緩沖液 50ml
PH7.2 組織石蠟切片制作.pdf

先取50 ml 8%多聚甲醛，用0.1M磷酸二氫鈉和0.1M磷酸氫二鈉將PH值調(diào)至7.2
4．Bouin液：
苦味酸飽和水溶液 75ml
36％~40％福爾馬林液 25ml
冰醋酸 5m1
5．改良Bouin氏固定液
苦味酸飽和水溶液 45ml
95%酒精 45ml
36％~40％福爾馬林液 5ml
冰醋酸 5m1

（三）染色液
1．Harris蘇木精液
A液：
蘇木精 1g
無水酒精 10ml
B液：
銨礬或鉀礬 20g
蒸餾水 200ml
氧化汞 0.5ml
冰醋酸 8ml
將礬溶于水，加熱溶解（B液），稍冷后將蘇木精酒精液（A液）混入B液，加熱，稍冷卻，加氧化汞，再繼續(xù)加熱1分鐘，染液變?yōu)樽仙�，注意在加氧化汞時(shí)宜逐漸少量加入，防止染液濺出。全冷后呈深紫色，將燒杯口用紗布蓋好，隔夜過濾，在過濾液內(nèi)每96 ml中加4 ml冰醋酸，放置1周后成熟，即可用于染色，保存期1~2個(gè)月。此染液在加醋酸后，對(duì)核染色特具選擇性，故很適于脫落細(xì)胞的核染色。由于染液內(nèi)已加有氧化劑，故不能長期儲(chǔ)存，但利于配后即用。
2．Mayer蘇木精掖
蘇木精 1g
鉀礬或銨礬 50g
碘酸鈉 0.2g
蒸餾水 1000ml
水合氯醛 50g
枸櫞酸 1g
將蘇木精，鉀礬及碘酸鈉依次加入水內(nèi)，略加熱并攪拌，此時(shí)液體呈藍(lán)色，待全溶后過夜。再加入水合氯醛及枸櫞酸并加熱至煮沸5分鐘，冷后過濾備用。如不急用可不煮沸而在室溫待其成熟，染液可較長期貯存使用。核染色鮮明，染色時(shí)間5—10分鐘。用該染液染色后，不需分化，充分水洗藍(lán)化后即可，伊紅復(fù)染細(xì)胞質(zhì)，使用一段時(shí)間后就要換新溶液。
3．Hasnsen甲礬蘇木精的配制
A液：蘇木精 1g
無水乙醇 10ml
B液：鉀礬 20g
蒸餾水 200ml
C液：高錳酸鉀 1g
蒸餾水 16ml
三液分別溶化后，將A液倒入B液，再加入C液3ml，充分?jǐn)嚢杈鶆蚝蠹訜嶂练序v，1分鐘左右，將容器置于冷水中使其迅速冷卻，此液配后即可使用，染后無需堿化，細(xì)胞核即為藍(lán)色，效果較好，高錳酸鉀可以迅速氧化蘇木精（每1g蘇木精需0.177g高錳酸鉀氧化）。
4．伊紅
0.5~1%水溶液或酒精溶液。
1．水溶性伊紅
伊紅 5~10g
蒸餾水 1000ml
冰醋酸 10滴
先將水溶性伊紅加入蒸餾水中，用玻璃棒攪起泡沫后過濾，再加冰醋酸。
2．醇溶性伊紅
伊紅 5~10g
70%~90%酒精 1000ml
冰醋酸 10滴
（四）其它
1．麻醉劑：
2~4%戊巴比妥鈉，1ml/kg體重（45mg/kg）。
2．各級(jí)濃度酒精的配制
75%；85%；95%；100%酒精。75%和85%酒精用95%酒精配制；（取75ml95%酒精，加水至95ml，即為75%酒精）
3．鹽酸灑精
多用于多種染色過程中的分色，如蘇木精染色后分色。配法是在100ml的70％酒精內(nèi)加0.5~1ml的濃鹽酸(Hcl)。用鹽酸酒精分色后要經(jīng)自來水充分沖洗組織切片，去除所含的酸再作其他處理。
4．碘酒
取碘5g，溶于95％酒精80ml，再加入20ml蒸溜水即成
5．生理鹽水
以氯化納0.85~0.90g溶于100m1蒸餾水配成的生理鹽水適用哺乳動(dòng)物



石蠟切片基本步驟之二取材固定

三、取材，固定

取材一定要迅速，應(yīng)在動(dòng)物處死后立即進(jìn)行解剖和切取組織材料，否則會(huì)引起細(xì)胞發(fā)生死后變化（如組織自溶及腐敗現(xiàn)象等），進(jìn)而失去原有的結(jié)構(gòu)，如果進(jìn)行酶組化染色，將會(huì)使大量的酶失活和丟失。
取材方法和注意事項(xiàng)
（1）取材用的刀剪必須鋒利，取材時(shí)應(yīng)用鑷子夾該組織的周圍的結(jié)締組織，凡是用鑷子夾過的或用手壓過的組織均不可用。
（2）根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求選擇不同的取材方法（整體取出臟器法、單個(gè)臟器取出法和切取組織塊法等）
（3）取材的先后順序原則。根據(jù)死后組織結(jié)構(gòu)改變的速度的快慢而定。先腹腔后胸腔，先消化管后肝、脾等多血的器官及神經(jīng)組織。
（4）取材組織塊的大小既要保證組織的完整性，又要力求小而薄，一般以25px×25px×12.5px為好，但有些特殊要求的可視情況而定。
（5）較小的組織或器官（淋巴結(jié)、松果體、腦垂體和神經(jīng)節(jié)等）應(yīng)整體固定，但要破壞其表面一側(cè)的被膜。
（6）管狀及囊狀組織（消化管的取材）都不應(yīng)斜切，先將一段腸管或食管剪下，從中剪開管腔，使之成片狀，然后將其鋪在紙板下，黏膜面朝上，用大頭針或細(xì)線將四邊固定，用生理鹽水漂洗黏膜表面，然后固定。
（7）較細(xì)的管狀臟器（輸尿管、輸精管、輸卵管、中動(dòng)脈和靜脈等）應(yīng)取下1~50px長，平鋪于硬紙片上或吸水紙上分段固定。
（8）取材要盡量注意臟器的完整性。
（9）應(yīng)根據(jù)所要觀察的部位及實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪M(jìn)行選擇組織的切面。對(duì)于病理材料，除切取病變部位外，還要切取病變和正常組織交界部分的區(qū)域，以利于進(jìn)行正常組織與病理組織的對(duì)比觀察分析。
（10）取材時(shí)要注明取材時(shí)間、組織器官名稱、固定液名稱、組織塊的數(shù)量、所取組織位于器官的部位等，以備查。
（六）固定
1．固定的目的
（1）防止組織溶解及腐敗，以保持組織和細(xì)胞與正常生活時(shí)的形態(tài)相似；
（2）使細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)、脂肪、糖、酶等各種成分轉(zhuǎn)變?yōu)椴蝗苄晕镔|(zhì)，以保持它原有的結(jié)構(gòu)與生活時(shí)的相仿；
（3）組織細(xì)胞內(nèi)的不同物質(zhì)經(jīng)固定后可以產(chǎn)生不同的折光率，對(duì)染料也產(chǎn)生不同的親和力，造成光學(xué)上的差異，使得在生活情況下原來看不清楚的結(jié)構(gòu)變得清晰起來，并使得細(xì)胞各部分容易著色，有利于區(qū)別不同的組織成分。
（4）固定劑的硬化作用，增加組織硬度，便于制片。
2．固定的對(duì)象和方法
（1）固定的主要對(duì)象是蛋白質(zhì)；
（2）固定液的量要足夠，其固定液的量一般不少于組織總體積的10倍以上（一般為1：20）。對(duì)于某些需要制作神經(jīng)染色和酶組織化學(xué)染色的組織固定，比一般的固定要嚴(yán)格。
（3）特殊的固定方法（注射或灌注固定）：某些組織塊由于體積過大或固定液極難滲入內(nèi)部或需要對(duì)整個(gè)臟器或整個(gè)動(dòng)物進(jìn)行固定，宜采用此方法，將固定液注入血管，經(jīng)血管分支到整個(gè)組織和全身，從而得到充分固定。
①局部灌注固定：
肺：肺內(nèi)含有空氣，固定難以滲入，可將固定液從氣管、支氣管或肺動(dòng)脈注入固定液，從支氣管注入時(shí)速度一定要慢，量不宜過多。注射固定后可將整個(gè)肺投入固定液中6~12小時(shí)，再分別切成小塊。
肝、腎：經(jīng)肝動(dòng)脈或腎動(dòng)脈注入固定液。
腦：動(dòng)物麻醉后暴露頸動(dòng)脈，以注射針尖向著關(guān)部的方向注入固定液。
②全身灌注固定：
步驟：取大白鼠，1%戊巴比妥鈉麻醉，打開胸、腹腔，縱向切開心包，用紗線在主動(dòng)脈弓起始部，然后用50ml注射器，選用適當(dāng)針頭，從左心室向主動(dòng)脈方向刺入，將紗線扎緊固定，在右心房開一孔放血，取用與動(dòng)物等量的生理鹽水注入血管中洗滌，待洗滌處的液體不見血時(shí)，再注入固定液。待動(dòng)物體有一定硬度時(shí)即可取材，將所需組織從動(dòng)物身上切去后，經(jīng)適當(dāng)處理，即投入固定液中（甲醛或多聚甲醛）
3．固定液的性質(zhì)和條件
（1）能迅速滲入組織，使組織細(xì)胞形態(tài)在短期內(nèi)不至于有較大變化。
（2）固定液有相當(dāng)?shù)臐B透力，對(duì)組織各部分的滲透力相等，可使組織內(nèi)外完全固定。
（3）使組織細(xì)胞不至于因固定而引起人為的改變。
（4）盡可能避免固定劑使組織膨脹或收縮。
（5）使組織達(dá)到一定硬度，獲得較佳的折光率和對(duì)染料具有較強(qiáng)的親合力。
4．固定時(shí)應(yīng)注意的事項(xiàng)
（1）固定液及被固定的組織必須新鮮；
（2）固定液的用量一般為組織體積的10~20倍，容器不要過小，材料也不要太多；應(yīng)避免組織緊貼瓶底或瓶壁，以免影響固定液的滲入，必要的時(shí)候可以在瓶底墊上一層棉花；
（3）固定時(shí)間視組織塊的種類、性質(zhì)、大小，固定液的種類、性質(zhì)、滲透力的強(qiáng)弱，固定時(shí)的溫度的高低，實(shí)驗(yàn)?zāi)康牡龋?br /> （4）防止被固定的組織因固定劑的作用而發(fā)生變形；
（5）固定所用的固定液，以新配的為好，放置過久會(huì)失效；
（6）在固定期間搖動(dòng)組織或搖動(dòng)容器有利于固定液的滲入，對(duì)長期固定的標(biāo)本，可經(jīng)常更換固定液
（7）取材固定應(yīng)同時(shí)作好記錄，包括組織名稱、固定液和時(shí)間等內(nèi)容。
5．固定劑
單純固定劑
（1）10%甲醛：對(duì)組織滲透性強(qiáng)，固定均勻。對(duì)組織膨脹約5%，經(jīng)酒精脫水時(shí)有較大的收縮。能保存脂肪，不能沉淀核蛋白及白蛋白，長期用其固定的組織使組織變?yōu)樗嵝裕焕谌旧�，特別是細(xì)胞核的著色。經(jīng)自來水沖洗6~24小時(shí)后，可以使其酸堿中和，并減少結(jié)晶。
（2）4%多聚甲醛：對(duì)組織穿透性好，組織收縮小，對(duì)大多數(shù)抗原物質(zhì)保存較好，特別是對(duì)脂肪和各種酶的固定效果更好。固定的時(shí)間不宜太長，以24小時(shí)以內(nèi)為宜，適用于免疫組織化學(xué)染色。
（3）飽和的苦味酸溶液：能沉淀一切蛋白質(zhì)，滲透力弱，對(duì)組織收縮大，故一般不能單獨(dú)使用。
（4）冰醋酸：滲透力強(qiáng)，沉淀核蛋白，對(duì)染色質(zhì)固定好，使組織膨脹，故一般不單獨(dú)使用。
（5）鋨酸：價(jià)格昂貴，為強(qiáng)氧化劑，易還原成氫氧化鋨，呈黑色沉淀；必須避光保存。不能沉淀蛋白質(zhì)，而使蛋白質(zhì)凝膠化，所以對(duì)蛋白質(zhì)固定不均勻，鋨酸固定的細(xì)胞能保持生活時(shí)的形態(tài)，不收縮細(xì)胞，對(duì)胞質(zhì)固定較長好，核的固定不好，鋨酸為脂肪及類脂質(zhì)的優(yōu)良固定劑，經(jīng)它固定的脂肪和類脂質(zhì)呈黑色，特別是對(duì)于是顯示線粒體和高難度爾基復(fù)合體效果良好。
混合固定劑
（1）Bouin氏固定液：為常用的良好的固定劑，穿透速度快，組織收縮性較小，固定均勻，固定后組織有適當(dāng)?shù)挠捕�，�?duì)于切片和染色均有良好的效果。一般固定12~24小時(shí)，固定后入70%酒精洗去苦味酸的黃色，在脫水時(shí)經(jīng)各濃度酒精也可洗去黃色，在酒精中加入氨水一滴或少許碳酸鉀飽和水溶液，可加快洗去苦味酸的黃色即使留有少量苦味酸的黃色，對(duì)一般染色體并無影響。
（2）Zenker液（PH2.3）：此液多用于一般組織的固定，它能使細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)染色清晰但固定時(shí)間長，一般要12~36小時(shí)，加熱可以縮短固定時(shí)間。固定后的組織必須流水沖洗12小時(shí)，由于固定中含有升汞，在經(jīng)70%酒精脫水時(shí)，加少量的碘液（0.5%碘酒精）以脫汞。
（3）Carnoy液：滲透力強(qiáng)，特別適宜于固定染色體、肝糖、粘液等一些較為細(xì)微的結(jié)構(gòu)。顯示DNA、RNA效果良好。
（4）改良Bouin氏固定液：此液對(duì)一般組織固定效果都很好，固定時(shí)間為4~18小時(shí)，固定后直接放70%乙醇脫水，固定時(shí)間較長對(duì)組織亦無損害。
（七）組織塊修整
固定后的組織塊可能會(huì)在外部形態(tài)上有些改變，或者由于組織在還未固定時(shí)就取材，組織器官較軟，取材不容易切平。經(jīng)固定后的組織有一定的硬度，此時(shí)就可以做一些修整，但改變不要太大，只是將組織材料切取平整，修掉一些不規(guī)則的部位。修整組織塊時(shí)，手術(shù)切片一定要鋒利。



石蠟切片基本步驟之三水洗，脫水，透明，浸蠟包埋

四、水洗
1．目的：
洗去滲入組織中的固定液，終止固定。以免影響對(duì)組織內(nèi)結(jié)構(gòu)的觀察、分析和研究。
2．原則和方法：
固定后的組織塊的沖洗，一般情況下是置水龍頭下以自來水流水沖洗，這樣可以使組織中的固定液隨時(shí)溢出，洗得更干凈徹底，有些還需要進(jìn)行特殊的洗滌。
（1）各種以水配制的固定液如甲醛，都必須用流水沖洗，大塊組織一般沖洗24小時(shí)，小塊組織一般沖洗2—10小時(shí)。
（2）固定液為多聚甲醛時(shí)，用于免疫組織化學(xué)等特殊染色的應(yīng)將組織投入PB緩沖液中，每60分鐘更新洗滌液一次，累計(jì)6小時(shí)。
（3）固定液為酒精或是酒精混合液，一般不需用水沖洗，其組織塊的洗滌應(yīng)用與固定液濃度相等垢酒精換洗或者直接進(jìn)行脫水的程序。
（4）用鋨酸或含有鋨酸的固定液固定的組織，必須用流水徹底沖洗干凈。
（5）經(jīng)含有苦味酸的固定液固定的組織塊，無論其固定液是水溶性還是酒精溶性，都應(yīng)充分沖洗，水溶性固定液固定的組織塊一般須沖洗12小時(shí)，再進(jìn)入70%的酒精溶液洗滌，酒精溶性固定液固定的組織塊直接進(jìn)入70%的酒精溶液洗滌，該溶液可以脫掉苦味酸的黃色，但最好從50%酒精開始洗滌。
（6）沖洗好的組織可存放在75%酒精內(nèi)
五、脫水包埋
（一）脫水
1．脫水的目的
組織內(nèi)的水不能和支持劑混合，所以必須把組織中的水分徹底脫除。脫水有利于組織的透明和浸蠟，有利于組織的永久保存。
2．脫水劑
（1）乙醇：可作固定劑，又可脫水劑，但乙醇與水混合時(shí)有較劇烈的物理反應(yīng)。高濃度的酒精對(duì)組織有強(qiáng)烈收縮及脆化的缺點(diǎn)，因此用乙醇脫水不能直接入純酒精中脫水，而必須經(jīng)過由高到低的一系列不同濃度的酒精，逐漸取代組織中水分，以保證組織脫水徹底，并避免組織過度收縮和硬化。
（2）丙酮：脫水能力比酒精強(qiáng)，但對(duì)組織的收縮更大，在組織學(xué)制片中較少使用，多用于病理快速切片，或用于某些組化水解酶的固定。
（3）正丁醇：是較好的脫水兼透明劑，可與酒精及石蠟混合，用于脫水是可先經(jīng)過各種不同濃度的正丁醇和乙醇混合液，再入正丁醇，進(jìn)行石蠟包埋時(shí)，可先用正丁醇和石蠟等量混合液，然后浸入純石蠟包埋，正丁醇用于脫水的優(yōu)點(diǎn)是很少引起組織收縮和脆硬，可替代二甲苯，是很好的脫水劑，但由于價(jià)格較貴，不常使用。
3．步驟
（1）乙醇脫水過程
50%乙醇 6~8小時(shí) -75%乙醇 6~8小時(shí) -85%乙醇 3~5小時(shí) -95%乙醇 1~2小時(shí) -95%乙醇 1~2小時(shí)-100%乙醇Ⅰ 1小時(shí)-100%乙醇Ⅱ 1小時(shí)
（2）丙酮脫水
如果是丙酮固定的組織，則不必再經(jīng)過乙醇，可以用新丙酮更換一次，便直接浸入二甲苯或苯中透明。其他水溶液固定的組織，均按上述乙醇脫水方法脫水，亦可由100%乙醇中移入丙酮繼續(xù)脫水2~4小時(shí)再入二甲苯透明，透明后浸蠟包埋。
（3）正丁醇脫水
組織用正丁醇脫水前，先經(jīng)50%乙醇脫水，然后移入正丁醇和乙醇混合液進(jìn)行脫水。
50%乙醇 6~12小時(shí)
50%乙醇+20%正丁醇+30%蒸餾水 5~8小時(shí)
50%乙醇+35%正丁醇+15%蒸餾水 4~6小時(shí)
45%乙醇+45%正丁醇+10%蒸餾水 3~5小時(shí)
25%乙醇+75%正丁醇 2~3小時(shí)
25%乙醇+75%正丁醇 1~2小時(shí)
15%乙醇+85%正丁醇 1~2小時(shí)
5%乙醇+95%正丁醇 1~2小時(shí)
100%正丁醇Ⅰ 1小時(shí)
100%正丁醇Ⅱ 1小時(shí)
4．注意事項(xiàng)：
（1）脫水的過程應(yīng)逐步地而不應(yīng)驟然地進(jìn)行，不能操之過急。
（2）脫水的時(shí)間應(yīng)根據(jù)組織塊的大小和組織的類型而定。
（3）組織塊在高濃度，特別是無水乙醇內(nèi)不能放置的時(shí)間太長。無水乙醇吸水能力太強(qiáng)，容易造成組織塊的過度硬化，使得切片理組織易碎裂。
（4）在脫水的過程中可以將組織塊停留在70%~80%的酒精中。
（5）每次更換新的脫水劑時(shí)（組織塊從低濃度到高濃度），都要把組織塊放在吸水紙上吸干，裝組織塊的容器也要控干水分，以免將水及低濃度脫水劑帶入高濃度脫水劑中，影響脫水效果。
（6）脫水劑的先擇要根據(jù)實(shí)驗(yàn)的要求及實(shí)驗(yàn)室的條件
（二）透明
1．透明的目的
置換組織內(nèi)的脫水劑，為下一步的浸蠟起到橋梁作用；
使組織呈現(xiàn)不同程度的透明狀態(tài)，有利于光線的透過。
2．透明劑
（1）二甲苯：是現(xiàn)在應(yīng)用最廣的一種透明劑，價(jià)格較便宜，不能和水混合，遇水則變成乳白色渾濁，因此必完全脫水后才能使用；易溶于酒精又能溶解石蠟，透明力強(qiáng)；其最大的缺點(diǎn)是容易使組織收縮變硬變脆，所以組織不能在其停留過久，透明時(shí)間視組織塊的大小、性質(zhì)而定；有的組織如肌肉、肌腱、軟骨、骨、皮膚、頭皮及眼球等，不宜用二甲苯透明，因組織過硬不易切片；長時(shí)間接觸，對(duì)粘膜有刺激作用。
（2）苯：性質(zhì)與二甲苯相似，對(duì)組織收縮也較小，組織也不易變脆，但透明較慢，組織在其內(nèi)可以滯留12~24小時(shí)，但毒性較大。
（3）香柏油：用為透明劑，效果很好，有高度透明作用，能與醇和二甲苯混合，香柏油對(duì)組織的硬化及收縮程度比任何其他透明劑都要小，但透明的速度較慢，3mm以下厚度的組織塊需12小時(shí)以上。香柏油與石蠟不易融合，即香柏油不易被石蠟取代，因此經(jīng)香柏油透明以后，可經(jīng)過二甲苯短時(shí)間媒浸，再進(jìn)行石蠟包埋。肌肉、皮膚、血管、膀胱、垂體及腎上腺等用香柏油效果較好。
3．二甲苯的步驟：兩次透明
第一次透明約40分鐘
第二次時(shí)間不一定，要視透明效果而定
4．注意事項(xiàng)
（1）時(shí)間不宜過長，否則組織會(huì)變脆；
（2）組織塊脫水必徹底。
（三）浸蠟、包埋（石蠟包埋法）
1．浸蠟
（1）浸蠟的目的
置換組織中的透明劑，為包埋做準(zhǔn)備。
（2）浸蠟的步驟
在60度恒溫蠟箱中放置3個(gè)蠟杯，分別編號(hào)1（52℃~54℃）、2（52℃~54℃，或54℃~56℃）、3（56℃~58℃），其中分別盛軟蠟、軟蠟、硬蠟，取透明好的組織塊放入軟蠟中各1小時(shí)，迅速取出放入硬蠟，同樣放置1小時(shí)。如果時(shí)間來及包埋，可以將已經(jīng)完成浸蠟的組織塊取出放在溫箱外，第二天繼續(xù)。
（3）注意事項(xiàng)
溫箱中的溫度必須嚴(yán)格控制在60℃的范圍，不能超過60℃；浸蠟時(shí)間不宜過長。浸蠟溫度過高或時(shí)間過長使組織收縮過度收縮和脆變。
2．包埋
（1）步驟
①準(zhǔn)備包埋蠟：一般應(yīng)用硬蠟（56~58℃或60~62℃）為好，所用的石蠟要求透明無雜質(zhì)，新的石蠟要反復(fù)熔凝，并有一定的粘韌性，可以加一些蜂蠟。蠟的熔點(diǎn)應(yīng)與組織的硬度相適應(yīng)。包埋用過的石蠟可以反復(fù)使用。
②準(zhǔn)備包埋框：可以用金屬的，也可以用硬紙摺疊。
③點(diǎn)燃酒精燈，準(zhǔn)備好無齒尖鑷子，需作標(biāo)記應(yīng)先寫好標(biāo)簽。
④在金屬框中倒入硬蠟，然后用無齒鑷子取組織塊放入石蠟中，置好方向�？墒覝叵吕鋮s。
⑤包埋框或紙盒內(nèi)的蠟逐漸凝結(jié)，若表面已凝結(jié)形成一層固體狀，即可放入冷水中，加速其凝固。
⑥待蠟塊完全凝固以后，便可拆卸包埋框架，或拆開紙盒，取出蠟塊。
（2）注意事項(xiàng)
①包埋時(shí)夾取組織的鑷子，用酒精燈隨時(shí)燒熱，以免石蠟?zāi)Y(jié)后粘附在鑷子上，造成蠟塊凝固不均勻。
②包埋操作要迅速，組織從浸蠟杯中取出置入包埋框中的時(shí)間應(yīng)盡量縮短。
③包埋后的蠟塊應(yīng)呈均質(zhì)半透明狀，如果出現(xiàn)白色混濁狀，一般出現(xiàn)在組織周圍或組織的底部，應(yīng)考慮這樣幾個(gè)方面的問題：a. 脫水不徹底。b.包埋蠟溫度低了，組織進(jìn)行包埋時(shí)，包埋框中的蠟已成凝結(jié)狀。c.組織內(nèi)還殘留有較多的透明劑，d.石蠟不純。
④包埋箱中的溫度必須保持恒定。
⑤如包埋得不好，可將蠟塊溶化，重新浸蠟和包埋。
⑥較小的組織可在脫水透明時(shí)開始用伊紅染色



石蠟切片基本步驟之四切片

六、石蠟切片制備
（一）石蠟切片前的準(zhǔn)備
1．切片刀。傳統(tǒng)的切片刀在使用之前，一定要在顯微鏡下檢查刀口的損傷程度，然后進(jìn)行磨刀�，F(xiàn)在也可以使用一次性刀片，可省去磨刀。
2．修整蠟塊：切去組織周圍過多的石蠟，一般情況下在組織周圍留有約1~2mm的石蠟邊，兩邊必須平行。
3．蠟塊固定：修整好的蠟塊先固定在事先準(zhǔn)備好的小方木塊或者金屬塊上，固定方法是把蠟鏟先在酒精燈上加熱，再將蠟塊底部烙熔，迅速烙粘在小方木塊或金屬塊底座上。
4．載玻片擦洗干凈后，在其表面涂上粘附劑（蛋白甘油、APES或多聚賴氨酸），根據(jù)染色方法選擇不同的粘附劑。
5．準(zhǔn)備好毛筆、鑷子、染色架。
6．調(diào)好展片器內(nèi)水的溫度（45℃），有時(shí)也可以加些酒精到水中。
（二）石蠟切片
1．將切片刀裝在刀片機(jī)的刀架上并固定緊，固定蠟塊底座或蠟塊，調(diào)整蠟塊與刀至合適位置，刀刃與蠟塊表面呈5度角。
2．切片多使用輪轉(zhuǎn)式切片機(jī)，切片時(shí)，左手執(zhí)毛筆，右手轉(zhuǎn)切片機(jī)轉(zhuǎn)輪，先修出組織塊。
3．調(diào)整切片機(jī)上的切片厚度為4~7μm，然后切片。
4．切片可以是單張，也可以是連續(xù)切片形成蠟帶
5．展片和撈片：
（1）直接展片法：在載玻片上滴加幾滴蒸餾水，然后把切片鋪在小滴上面，用酒精燈在載玻片下面加熱，待完全展平，傾斜載玻片，倒棄多余水分，同時(shí)擺正切片。
（2）溫水漂浮法：此法用展片機(jī)或者用恒溫水浴箱，先使水溫保持在45~50℃，用左手拿毛筆輕輕托起切片，用右手用眼科鑷子夾起切片的一角，正面向上輕輕平鋪放置于展片器的水面上，動(dòng)作要輕快，切好的石蠟切片漂浮在溫水中受熱后及在表面張力的作用會(huì)自然平整地展開，必要時(shí)可用眼科鑷輕輕拔開，然后撈片，并及時(shí)編號(hào)。
6．展好的切片在室溫下稍微干燥后，放在40℃恒溫烤箱中，小片組織30分鐘即可，大的需12~24小時(shí)，烤干備用。
（三）注意事項(xiàng)
1．切片刀刃傾斜過大或過小都不能正常進(jìn)行切片。
2．修整蠟塊時(shí)要細(xì)心，看清楚組織在蠟塊中的位置，以免將需要的組織修掉。
3．連續(xù)轉(zhuǎn)動(dòng)切片機(jī)的轉(zhuǎn)輪時(shí)，速度一定要均勻，不能時(shí)快時(shí)慢，以免切片厚薄不一。
4．使用輪轉(zhuǎn)式切片機(jī)切片時(shí)，是由下向上切，為得到定然整的切片，防止組織出現(xiàn)刀紋裂縫，應(yīng)將組織硬、脆難切的部分放在上端，如皮膚應(yīng)將表皮部分向上，腸胃等組織應(yīng)將漿膜面面朝上。
5．用展片器展片時(shí)，水溫應(yīng)根據(jù)使用的石蠟熔點(diǎn)進(jìn)行了調(diào)整，一般低于石蠟熔點(diǎn)10~15℃；撈片的時(shí)候動(dòng)作要輕、稍快。動(dòng)作太大容易出現(xiàn)氣泡。如果沒有展片器可以用溫水浴鍋來代替。
6．單個(gè)切片要擺到載玻片的1/3與2/3交界處；連續(xù)切片的粘片順序一般是從左到右，組織切片較小是，可以并列粘貼2~3條蠟帶。
7．烤片的溫度不宜過高；烤片的時(shí)間要合適。腦組織要待稍微晾干一些后，才能烤片，否則容易產(chǎn)生氣泡影響染色和觀察。
七、H-E染色
（一）步驟
1．脫蠟
二甲苯I 10分鐘 ;二甲苯II 5分鐘
2．水化
100%酒精I(xiàn) 5分鐘 ;100%酒精I(xiàn)I 5分鐘;95%酒精I(xiàn) 5分鐘;95%酒精I(xiàn)I 5分鐘 ;85%酒精 3分鐘 ;75%酒精 2分鐘;蒸餾水沖洗 1分鐘
3．染色
蘇木精染色 5分鐘;自來水洗
鹽酸酒精分化 15秒;自來水洗（鏡檢）;自來水洗 15分鐘
0.5%伊紅染色 1分鐘 ;蒸餾水洗 2分鐘
75%酒精 2分鐘-85%酒精 2分鐘-95%酒精I(xiàn) 5分鐘-95%酒精I(xiàn)I 5分鐘-100%酒精I(xiàn) 5分鐘-100%酒精I(xiàn)I 5分鐘 -二甲苯I 5分鐘-二甲苯II 5分鐘
4．封片
中性樹膠封片
上述處理好的玻片，取中性樹膠滴入載玻片的組織上，取蓋玻片從一端逐步蓋下去，避免發(fā)生氣泡
（二）注意事項(xiàng)
1．染色之前一定要了解清楚所用的染色液的配制方法，不同的染色液染色后的處理是不一樣的。
2．染色過程中所用的時(shí)間要根據(jù)染色時(shí)的室內(nèi)溫度、染液的新鮮程度及實(shí)驗(yàn)室的實(shí)際情況等靈活掌握。在室溫高、切片、染色液又是新配制的，染色時(shí)間就要短，反之時(shí)間就長。
3．伊紅有水溶的和醇溶的，如果用的是水溶的，應(yīng)該在脫水前進(jìn)行染色，如果是醇溶的，應(yīng)使用與溶解伊紅等濃度的酒精開始脫水。
4．在二甲苯脫蠟之前可以先在60℃烤箱內(nèi)0.5~1小時(shí)，這樣可以使切片粘附更牢固不易脫片，也有利于脫蠟。
5．二甲苯在HE染色中有脫蠟、透明的作用。二甲苯脫蠟的好壞主要取決于切片在二甲苯內(nèi)放置的時(shí)間和脫蠟時(shí)的溫度以及二甲苯的使用次數(shù)。染好的切片必須經(jīng)過透明，有利于顯微鏡觀察，同時(shí)并為封片起到了橋梁作用。
6．用梯度酒精脫水時(shí)，在低濃度酒精中時(shí)間不宜過長，到高濃度時(shí)逐步延長脫水時(shí)間。以免脫水不徹底，影響二甲苯透明的效果。
7．在酸性分化液內(nèi)停留的時(shí)間不要過長，分化不可過度，避免使細(xì)胞核內(nèi)該染上色的結(jié)構(gòu)脫色。不需分化處理的蘇木精染色時(shí)要注意掌握染色時(shí)間，以防止組織切片染色背景過深或細(xì)胞核、胞質(zhì)染色不足。
2樓2015-08-30 09:56:53
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【答案】應(yīng)助回帖

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硬紙一張，折成深3cm寬2cm的深槽子，槽兩側(cè)封閉好，兩邊放平整的槍盒夾起來，只要保證這兩點(diǎn)就可以倒蠟包埋了。

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3樓2015-08-30 10:55:19
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