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破骨細胞的傳代、凍存與復蘇
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實驗動物:成年SPF級雄性SD大鼠1只, 體重250g。 實驗方法及步驟 1、外周血單個核細胞分離 (1)標本采集:取SPF 成年 SD 大鼠 1 只,3%戊巴比妥鈉,按動物體重0.15 ml/100g,腹腔注射麻醉。無菌操作下腹主動脈采血6 ml,注入肝素抗凝管中。 (2)單個核細胞分離:采用密度梯度離心法, 向采集的血樣標本內加入等量的PBS,取4支15ml離心管,分別加入大鼠淋巴細胞分離液各3ml,再緩緩向各離心管內加入上述含PBS血樣各3ml,然后以2000r/min,水平離心20min,取出后在絮狀層小心吸取單個核細胞,分別收集到2支離心管中,PBS清洗2次,備作重懸培養(yǎng)。 2、破骨細胞的誘導培養(yǎng) 將分離純化的大鼠周圍血單個核細胞,用含10%FBS、50ng/mlRANKL、20ng /mlM-CSF、100U/ml青霉素、100U/ml鏈霉素的 α-MEM培養(yǎng)液重懸,調整細胞密度為1×105個/ml。再將配制好的細胞懸液接種到6孔培養(yǎng)板與直徑35 mm培養(yǎng)皿中。直徑35mm培養(yǎng)皿用于活細胞工作站動態(tài)跟蹤成像,6孔培養(yǎng)板置 于CO2培養(yǎng)箱內,在37℃、5%CO2、飽和濕度下連續(xù)培養(yǎng),用上述含RANKL、M-CSF的α-MEM 培養(yǎng)液換液,每3日1次。同時對整個培養(yǎng)過程作相差顯微鏡觀察與活細胞成像,培養(yǎng)14 d作抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色。 3、破骨細胞的傳代 大鼠周圍血單個核細胞經RANKL、M-CSF 誘導培養(yǎng)2周,形成大量貼壁的多核破骨細胞后,從培養(yǎng)箱中取出,將培養(yǎng)液吸凈,加入37 ℃預溫的D-Hank's液,沖洗2次,再滴加足量的0.25%胰蛋白酶液,使其覆蓋整個底面,置于37 ℃培養(yǎng)箱中消化5min后取出,震蕩1min左右,在倒置相差顯微鏡下觀察,當大部分細胞收縮懸起后,加入α-MEM完全培養(yǎng)液終止消化,用吸管反復抽吸吹打,將細胞混勻后移入15ml離心管,2000r/min,離心5min,去上清,用含RANKL、M-CSF的α-MEM完全培養(yǎng)液重懸細胞, 調整濃度至1×105個/ml,接種細胞至6孔培養(yǎng)板與直徑35mm 培養(yǎng)皿中。同時對消化與貼壁過程作活細胞成像觀察,3d后作TRAP染色。 4、破骨細胞的凍存 按破骨細胞傳代方法,將誘導培養(yǎng)的破骨細胞制成細胞懸液,2000r/min,離心5min,去上清,用DMSO、FBS、α-MEM 按1∶2∶7 比例配制的凍存液,重懸細胞,調整細胞濃度至5×106個/ml,加入凍存管,每支1.5ml,用凍存罐在溫度為-80℃冰箱中放置24h,再移至-196 ℃液氮中凍存。 5、破骨細胞的復蘇 從液氮中取出凍存的破骨細胞,迅速在 37 ℃水浴中震蕩融解,將融解的細胞懸液加入15ml離心管中,再加6ml α-MEM完全培養(yǎng)液,混勻,2000r/min,離心5min,去上清,用含RANKL、M-CSF 的α -MEM完全培養(yǎng)液,按1×105個/ ml的細胞濃度重懸后,分別接種到6孔培養(yǎng)板與直徑35mm培養(yǎng)皿中。同時對接種后的貼壁過程作活細胞成像觀察,3d后作TRAP染色。 觀察項目與方法 1、活細胞成像觀察 (1)破骨細胞誘導培養(yǎng)的活細胞成像 觀察:取直徑35mm培養(yǎng)皿,將其置于活細胞工作站倒置顯微鏡的培養(yǎng)室中,在相差觀察模式、20倍物鏡下,以1f/6s的采集速度,對整個培養(yǎng)過程作序列圖像捕獲,進行單幀圖像分析與縮時視頻動態(tài)觀察。 (2)破骨細胞傳代培養(yǎng)的活細胞成像 觀察:取直徑35mm培養(yǎng)皿培養(yǎng)的破骨細胞,將其置于活細胞工作站倒置顯微鏡的培養(yǎng)室中,在相差觀察模式、20倍物鏡下,選擇貼壁良好,胞質充分展開,細胞核清晰可見的多核破骨細胞,調整到視野中心,然后將培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)液吸凈,再用 37℃預溫的D-h(huán)ank's 液緩緩沖洗2遍,吸干。 以1 f/s的采集速度,開始序列圖像捕獲,同時向培養(yǎng)皿內加入1ml 0.25%胰蛋白酶溶液,記錄破骨細胞在胰蛋白酶作用下的整個消化過程,約5min。當細胞胞體收縮,呈飽滿圓亮、半懸浮狀態(tài)時,加入2ml α-MEM 完全培養(yǎng)液終止消化,用吸管吹吸,使其形成均勻的細胞懸液,再移入2ml滅菌EP管,2000r/min離心3min,去上清,用含 RANKL、M-CSF 的α-MEM完全培養(yǎng)液重懸細胞,接種到另一個直徑35 mm培養(yǎng)皿,放回活細胞工作站的培養(yǎng)室中,再按上述方法選擇圓亮飽滿、體積較大的多核破骨細胞,置于觀察視野中心,以1f/6s采集速度進行序列圖像采集,觀察破骨細胞傳代后的整個貼壁過程。 (3)破骨細胞復蘇培養(yǎng)的活細胞成像 觀察:破骨細胞復蘇培養(yǎng)后,立即取直徑35mm培養(yǎng)皿培養(yǎng)的破骨細胞置于活細胞工作站的培養(yǎng)室中,按上述破骨細胞傳代后的活細胞成像觀察方法,進行序列圖像采集,觀察破骨細胞復蘇培養(yǎng)后的整個貼壁過程。 2、TRAP染色 取培養(yǎng)細胞,吸凈孔內培養(yǎng)液,用37 ℃預溫的PBS沖洗2次,再用2.5%戊二醛常溫下固定2min,去離子水漂洗3次。取堅牢石榴紅GBC溶液0.1ml和亞硝酸鹽溶液0.1ml,輕輕混合30s,靜止2min。將上液加入到9ml 預熱至37 ℃的去離子水中,再依次加入0.1ml萘酚AS-BI磷酸鹽溶液、0.4ml 醋酸鹽溶液、0.2ml 酒石酸鹽溶液,制得染色液。將染色液加入培養(yǎng)孔內,37℃孵育,注意避光。15min后觀察染色效果,呈最佳效果時即終止染色,取出后去離子水沖洗,晾干,倒置顯微鏡下觀察,DP-72 數(shù)字成像系統(tǒng)采集圖像。 |
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