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[交流]
【求助/交流】求助:酵母感受態(tài)細(xì)胞的制備 已有4人參與
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老板要求至少要用5種化學(xué)法制備畢赤酵母感受態(tài)細(xì)胞及轉(zhuǎn)化,在這里跪求各位蟲友的幫助! 急求:酵母化學(xué)感受態(tài)細(xì)胞的制備及轉(zhuǎn)化方法,,注意要的是化學(xué)法,電轉(zhuǎn)化法不需要!希望大家?guī)椭≈x謝! [ Last edited by 527702467 on 2010-6-2 at 10:28 ] |
金蟲 (小有名氣)
木蟲 (正式寫手)
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1、畢氏酵母氯化鋰轉(zhuǎn)化法 (1)試劑 1M LiCl(用去離子蒸餾水配制,濾膜過濾除菌;必要時用消毒去離子水稀釋) 50% PEG3350(Sigma P3640 用去離子蒸餾水配制,濾膜過濾除菌,用較緊的蓋子的瓶子分裝) 2mg/ml salmon sperm DNA / TE(10mM Tris-Cl, pH8.0, 1.0mM EDTA)-20℃保存 注:醋酸鋰對畢氏酵母無效,僅氯化鋰有效;PEG3350可屏蔽高濃度LiCl的毒害作用; (2)感受態(tài)畢氏酵母的制備 接種Pachia pastoris到50ml YPD培養(yǎng)基中,30℃搖菌過夜(約24~28h)培養(yǎng)到OD值為0.8~1.0(約108 Cells/ml); 收獲細(xì)胞,用25ml無菌水洗滌一次,室溫下1500g離心10min; 重懸細(xì)胞于1ml 100mM LiCl溶液中,將懸液轉(zhuǎn)入1.5ml離心管; 離心機最大速度離心15秒沉淀菌體,重懸菌體于400ul 100mM LiCl溶液中; 按50ul/管分裝,立即進(jìn)行轉(zhuǎn)化; 注:不要將感受態(tài)酵母菌冰。 (3)畢氏酵母的轉(zhuǎn)化 煮沸1ml鮭魚精DNA 5min,迅速冰浴以制備單鏈擔(dān)體DNA; 將感受態(tài)酵母菌離心,以Tips去除殘余的LiCl溶液; 對于每一個轉(zhuǎn)化,按以下順序加入: 50% PEG3350 240ul 1M LiCl 36ul 2mg/ml 單鏈Salmon sperm DNA 25ul 5~10ug/50ul H2O 質(zhì)粒DNA 50ul 劇烈旋渦混勻直至沉淀菌體完全分布均勻(約1min); 30℃水浴孵育30min; 42℃水浴熱休克20~25min; 6000~8000rpm離心收集酵母菌體; 重懸酵母于1ml YPD培養(yǎng)基,30℃搖床孵育; 1~4h后,取25~100ul菌液鋪選擇性培養(yǎng)基平板,于30℃培養(yǎng)2~3天鑒定; 2、畢氏酵母PEG1000轉(zhuǎn)化法 (1)試劑 緩沖液A:1.0M Sorbitol,10mM Bicine,pH8.35(sigma),3%(v/v)ethylene glycol 緩沖液B:40%(w/v)PEG1000(sigma),0.2M Bicine,pH8.35 緩沖液C:0.15M NaCl,10mM Bicine,pH8.35 未污染的新鮮、試劑級DMSO,-70℃保存 注: 緩沖液A、B、C均用濾膜過濾,-20℃保存; 將DNA直接加在凍結(jié)的酵母細(xì)胞上是本實驗的關(guān)鍵之處(即使在冰上解凍的待轉(zhuǎn)化細(xì)胞,其攝取外源DNA的能力也在解凍過程中迅速下降;如進(jìn)行多樣品的轉(zhuǎn)化,建議按6樣品/組進(jìn)行); (2)待轉(zhuǎn)化畢氏酵母的制備 接種環(huán)接種Pachia pastoris于YPD平板,30℃培養(yǎng)2d; 挑取單克隆酵母菌株于10mlYPD培養(yǎng)基中,30℃振蕩培養(yǎng)過夜; 取步驟2中小量菌液接種到100mlYPD培養(yǎng)基中振蕩培養(yǎng),待其OD值從0.1升到0.5~0.8; 室溫下3000g離心收集酵母菌體,50ml緩沖液A洗滌一次; 重懸菌體于4ml緩沖液A中,按0.2ml/管分裝于1.5ml的離心管中,每管加入11ulDMSO,混合后迅速于液氮中冷凍, -70℃保存 (3)畢氏酵母的轉(zhuǎn)化 將約50ug線性化質(zhì)粒DNA溶于20ul TE或水中,直接加于凍結(jié)的酵母細(xì)胞中;加入擔(dān)體DNA(40ug變性超聲線性化鮭魚精DNA)以獲得最大轉(zhuǎn)化率; 37℃水浴孵育5min,中間混合樣品1~2次; 取出離心管,加入1.5ml緩沖液B,徹底混勻; 30℃水浴孵育1h; 室溫下2000g離心10min,去除上清液,菌體沉淀重懸于1.5ml緩沖液C中; 離心樣品,去除上清液,輕微操作將樣品重懸于0.2ml緩沖液C中; 將所有轉(zhuǎn)化液鋪于選擇性平板,于30℃孵育3~4天后,鑒定; 3、畢氏酵母電轉(zhuǎn)化法 (1)E.coli TOP10F’感受態(tài)細(xì)胞的制備 取10ul TOP10F’菌液,接種于200ml LB液體培養(yǎng)基中活化培養(yǎng),37℃,200 rpm,16~18小時。取100ul菌液接種于200ml液體LB培養(yǎng)基中。 37℃,200 rpm,培養(yǎng)16~18小時。 滅菌500 ml離心管,4℃,4000 rpm,20 min。得菌體沉淀。棄上清,菌體用10%甘油重懸并洗滌。重復(fù)洗滌3次。 第三次離心后,棄絕大部分上清,留下約1ml 液體用于重懸菌體。 從制得得感受態(tài)細(xì)胞中,取200ul于滅菌EP管中,加入連接反應(yīng)產(chǎn)物5ul,混勻,不要產(chǎn)生氣泡,在冰上放置5min。 將混勻后得200ul菌液移入電擊杯中。 使用電擊穿孔儀進(jìn)行轉(zhuǎn)化,設(shè)置為電壓 2500 V,時間 5 ms。 電擊后,往電擊杯中加入 800ul SOC培養(yǎng)基,沖洗出菌體,轉(zhuǎn)移至滅菌1.5 ml EP管中。37℃,150 rpm ,輕搖45~60 min。 取全部均勻涂布于含 Zeocin 25 ug/ml 的LLB-Zeocin平板上,正放,待涂布液不在流動,37℃ 培養(yǎng)12~16小時。 (2)線性化質(zhì)粒DNA對Pichia pastorisGS115的轉(zhuǎn)化 取新鮮制備的(或-70℃凍存的)感受態(tài)細(xì)胞置于冰浴中,使其完全解凍; 1)將100μl菌體移出至一新的無菌Eppendorf管中,加入5-20μg線性化質(zhì)粒(5~10μl),輕彈混勻,盡數(shù)吸出轉(zhuǎn)移到0.2cm型的電穿孔轉(zhuǎn)化杯中; 2) 轉(zhuǎn)化杯置于冰浴中5~10分鐘,保持低溫。 3) 電穿孔轉(zhuǎn)化電擊條件:電壓:1500V;電阻:400Ω;電容:25μF;脈沖時間:10mS;一次電擊。 4) 電擊后,馬上在電擊轉(zhuǎn)化杯中加入1ml 4℃預(yù)冷的1M的山梨醇溶液,用微量移液槍吹打均勻,置于冰浴中; 5) 取30℃烘至表面半干的MD培養(yǎng)基平板,在超凈工作臺上無菌操作涂布平板,400μl/板 |
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