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xiajing_acm新蟲 (小有名氣)
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[求助]
關(guān)于MTT加液與棄液的一些思考與疑問
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給位大俠: 你們好,小弟要著手MTT,里面有些問題不太清楚,請給位指點(diǎn): 1、種板時(shí)我每孔打算加100μl 共5000個(gè)左右細(xì)胞,等細(xì)胞貼壁后需不需要把培養(yǎng)液吸出之后再加入100μl 的藥液呢?我看有的資料上說直接加入100μl藥液維持到200μl的體系,可是我是按照100μl體系來算的加藥量啊,如果不吸走里面原有的100μl培養(yǎng)液的話,那我的藥物濃度豈不被稀釋了一倍嗎? 2、加藥處理適當(dāng)時(shí)間后,在加MTT需不需要把里面的培養(yǎng)液吸出來呢?若吸出來的話,那么是直接加入20μl 的5mg/ml的MTT呢,還是需要加入180μl新鮮的培養(yǎng)液+20μl 5mg/ml的MTT呢?是用含血清的培養(yǎng)基還是不含血清的? 3、加DMSO之前需要吸走培養(yǎng)液吧?給位戰(zhàn)友是怎么操作才能保證不把甲瓚結(jié)晶吸走呢?需要在平板離心機(jī)上離心嗎? 4、上酶標(biāo)儀檢測波長到底選擇多少合適呢?490還是570nm呢?還需要設(shè)630nm參比波長嗎?參比波長作用是什么呢?怎么用它的數(shù)據(jù)呢? 非常感謝各位大俠,盼早日解決!祝各位一切順利! |
銀蟲 (小有名氣)
銀蟲 (初入文壇)
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1.這個(gè)主要看你的藥物性質(zhì)以及培養(yǎng)時(shí)間,因?yàn)樵谂囵B(yǎng)基中存在的血清,成分復(fù)雜,有時(shí)會(huì)干擾MTT結(jié)果,所以需要吸出原培養(yǎng)液后再給藥,但也有一種可能,即培養(yǎng)時(shí)間比較長,細(xì)胞個(gè)數(shù)大則會(huì)把培養(yǎng)液中所含有的血清消耗掉,這樣就不用換液了,對于后半個(gè)問題,你加倍濃度不就OK了嗎? 2.如果細(xì)胞帖的緊,一般來說要把原液吸出去,否則MTT會(huì)與一些藥物形成二聚體影響結(jié)果.用不含血清的培養(yǎng)基采用后一種辦法加入. 3.這個(gè)是肯定得吸走的啊,我做過SY5Y,直接把板子倒過來,扣去液體即可.沒試過離心,但原理上應(yīng)該可以. 4.不需要參比波長,490-570都行,看你的顏色深淺而定 僅供參考嘿嘿 |
新蟲 (小有名氣)
木蟲 (小有名氣)
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1、你可以吸出50,再加入50ul新的培養(yǎng)基,其中藥物濃度翻倍。 2、一般不用吸出原來的培養(yǎng)基,直接加入10ulMTT即可。 3、這個(gè)問題要看細(xì)胞貼壁牢固程度了,想前面那位大俠,細(xì)胞貼壁牢固,直接把板反過來,下面墊無菌吸紙,培養(yǎng)基就會(huì)被自動(dòng)吸走;如果細(xì)胞貼壁不牢固,那你就要考慮把板傾斜了,把其中的培養(yǎng)基輕輕吸出來,但是要注意,tips頭部不要碰到板的地步,否則會(huì)吧細(xì)胞粘下來。還有些懸浮細(xì)胞MTT時(shí),直接往里面加入裂解液了,也是可以把甲瓚溶解的。 4,一般選擇490nm波長。 |
木蟲 (著名寫手)
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首先,我也考慮過這個(gè)問題1,最后的解決方案是將藥物配成100倍液,加的時(shí)候我就直接往100里加1微升了。主要考慮的不是藥的濃度問題,因?yàn)檫@要確定好之后才好配的,而是控制變量的問題,體積大了,細(xì)胞的環(huán)境就不同了。。。 2.MTT的原理你有沒有了解,它是靠活細(xì)胞的酶反應(yīng),我認(rèn)為,不要餓著它了,原來是什么培養(yǎng)液就繼續(xù)用那個(gè),如果不是培養(yǎng)了太久,就直接加MTT了(除非,你的藥物具有還原性。。 3.論壇里有一帖,很詳細(xì)的講了MTT法,里面有,建議搜一下看看,我看了很受用 4.我用著的是570測定,630參比。沒方法,還是貼個(gè)鏈接你吧,http://www.biomart.cn/experiment/430/488/498/17544_1.htm 其他論壇上的,說法有多種,僅供參考 |

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