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pumpkin236鐵蟲 (小有名氣)
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[求助]
SIRNA
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各位前輩 我最近開始做基因沉默,沉默的是NIH3T3細胞系的sep15基因,但是用RT-PCR檢驗發(fā)現沉默效率為0,不知道是怎么回事,所以請大家?guī)臀铱匆幌?br /> 1 siRNA序列的選擇 我參考的是一篇文獻,下面 The following Stealth RNA interference (RNAi) duplexes (Invitrogen, Carlsbad, CA) were used: Sep15, UCCUGAGCGAGAAGUUGGAACGCAU; 文獻給的是sep15的RNA單鏈,是不就是給的miRNA序列,(看到一個帖子介紹了miRNA和siRNA的區(qū)別,說miRNA是單鏈,siRNA是雙鏈)? 我直接按堿基配對原則,配對成了雙鏈的RNA。當做siRNA。讓公司合成 但是現在沉默效率為0.不知道是本身siRNA序列合成錯誤還是其他原因 2 使用的轉染試劑是lipo2000 步驟如下 ①① 以合適的密度接種細胞至6孔培養(yǎng)板中,在轉染的前一直用10%新生小牛血清而無雙抗的DMEM高糖培養(yǎng)液進行培養(yǎng)。當細胞培養(yǎng)到80%融合時,換用無血清無雙抗的DMEM高糖培養(yǎng)液培養(yǎng)并進行轉染; ②② 對于需要轉染的每孔細胞,用250μl的DMEM無血清培養(yǎng)基來稀釋5μl的siRNA引物(含siRNA引物的量為100pmol); ③③ 用250μl的DMEM無血清無雙抗培養(yǎng)基來稀釋5μl的Lipofectamine2000; ④④ 一旦Lipofectamine2000被DMEM稀釋,5分鐘內將稀釋的siRNA引物(步驟2)和稀釋的lipofectamine2000(步驟3)混合均勻,在在室溫下孵育20min促使siRNA引物與lipofectamine2000混合物的形成; ⑤⑤ 孵育完成后,直接往每孔中加入siRNA引物與lipofectamine2000混合物500μl,補足無血清培無雙抗培養(yǎng)基至2000μl,并輕輕搖晃培養(yǎng)板使其混勻; ⑥⑥ 轉染24h后,可檢測目的蛋白質的表達或加藥進行后續(xù)試驗。 實驗中發(fā)現的問題 1轉染前細胞狀態(tài)較好,但是轉染后6h去觀察,發(fā)現有部分細胞死亡,而且背景有很多小黑點,24h觀察,有很多成團的漂浮物。死細胞不像,如果是染菌了,但是我操作已經很小心,實驗也重復了三次,三次都是到轉染后才出發(fā)好多漂浮物。 2用RT-PCR檢驗,沉默效率為0,郁悶死了。大家檢驗轉染效率是用wb,還是PCR 3大家都用的什么轉染試劑 4 不知道是不是我的siRNA序列選擇錯誤。siRNA可以用miRNA按照堿基配對方法合成不 在線等答案 謝謝了 |
鐵蟲 (小有名氣)
至尊木蟲 (正式寫手)
Juventus
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給樓主一個做RNA干擾的公司(武漢晶賽)的網址吧,上面有一些做RNA干擾的原理方法:http://www.genesil.com/knowledge.asp?kid=29 另外,我們以前做RNA干擾的時候都是至少設計兩條siRNA;再另外,你們做RT-PCR的時候有沒有先做一個時間梯度的摸索,其他還木有想到(好久木有做了) |

榮譽版主 (文壇精英)
合伙創(chuàng)業(yè)版兼職版主
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siRNA不好做,對于新手可以選擇更好控制的shRNA,shRNA是雙鏈DNA構建載體,比較好操作 干擾序列一般要選3段,不建議自己設計,成功率低,你可以到NCBI 的探針庫去找,或者查文獻找現成的 lipo2000的毒性眾所周知,漂細胞也在所難免 ps lipo的假貨很多,最好原裝 至于檢測,RT-PCR需要做熒光定量才行,WB也可以,不過時間點一定要控制好,早了不干擾,晚了干擾過了又回復了,畢竟他不能整合 |
木蟲 (著名寫手)
小笨蟲蟲
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細胞死亡太多,可能和轉染試劑以及細胞狀態(tài)有關,你應該會做一個陰性的FAM標記的轉染對照,看一下在這個過程中轉染效率以及siRNA是否穩(wěn)定,另最好做一個beta-actin siRNA的陽性對照。如果是rt-PCR檢測的最好是24-48小時抽提,如果做wb,可以48-72小時抽提。 很久不玩了,只有這些建議。 |

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