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[求助]
RAPD標(biāo)記有問題,虛心請教。。。。
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條件優(yōu)化結(jié)束,確定體系后,已經(jīng)開始做多態(tài)性了。但做了幾個引物就出問題了,找了很久,也不知道是什么原因,求教高手。 圖1(做的比較好) 圖2 (從某一天開始,所有的多態(tài)性都跟這個差不錯,背景特別亮) 緊急呼救啊。。。 ![]() 圖2 圖1 [ Last edited by 墨池 on 2011-11-30 at 10:11 ] |

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RAPD技術(shù)是建立在PCR技術(shù)的基礎(chǔ)上,它用一系列(通常數(shù)百個)不同的隨機排列堿基序列的寡核苷酸單鏈(一般為10個bp)作為引物,對所研究的基因組DNA進(jìn)行單引物擴增。模板DNA經(jīng)90—94變性 解鏈后在較低溫度(36~37℃)下退火,這時形成的單鏈模板會有許多位點與引物互補配對,在 72℃下,通過鏈延伸,形成雙鏈結(jié)構(gòu),完成DNA合成。重復(fù)上述過程,即可產(chǎn)生片段大小不等的擴增產(chǎn)物,通過電泳分離和顯色便可得到許多不同的條帶,從中 篩選出特征性條帶。擴增產(chǎn)物片段的多態(tài)性反映了基因組DNA的多態(tài)性。如果基因組在這些區(qū)域內(nèi)發(fā)生DNA片段插入、缺失或堿基突變就可能導(dǎo)致這些特定結(jié)合 位點的分布發(fā)生相應(yīng)的變化,而使PCR產(chǎn)物增加、缺少或發(fā)生分子量的改變。因此,通過對PCR產(chǎn)物的檢測即可測出基因組DNA在這些區(qū)域的多態(tài)性。進(jìn)行 RAPD分析時,可用引物的數(shù)量很大,雖然對每個引物而言,其檢測基因組DNA多態(tài)性的區(qū)域是有限的,但是利用一系列引物則可以使檢測區(qū)域幾乎覆蓋整個基 因組。因此,RAPD可以對整個基因組DNA進(jìn)行多態(tài)性檢測。 RAPD技術(shù)的優(yōu)點: ①不使用同位素,減少了對工作人員健康的危害; ②可以在物種沒有任何分子生物學(xué)研究 的情況下分析其DNA多態(tài)性; ③對模板 DNA的純度要求不高; ④技術(shù)簡單,無需克隆DNA探針,無需進(jìn)行分子雜交; ⑤靈敏度高,可提供豐富的多態(tài)性; ⑥RAPD引物沒有嚴(yán)格的種屬界限,同一套 引物可以應(yīng)用于任何一種生物的研究,因而具有廣泛性、通用性。 但是,RAPD技術(shù)較易受到各種因素的影響。無論是模板的質(zhì)量和濃度,短的引物序列,PCR的循環(huán)次數(shù),基因組DNA的復(fù)雜性,技術(shù)設(shè)備等,都有可 能是RAPD技術(shù)重復(fù)性差的直接原因。目前,多從以下幾個方面來提高反應(yīng)的穩(wěn)定性: ①操作規(guī)范,反應(yīng)體系的組成要力求一致,盡可能地使RAPD反應(yīng)標(biāo)準(zhǔn) 化; ②提高擴增片段的分辨率; ③將RAPD標(biāo)記轉(zhuǎn)化為SCAR標(biāo)記后再進(jìn)行常規(guī)的PCR分析,可以提高反應(yīng)的穩(wěn)定性及可靠性。 |


金蟲 (正式寫手)
新蟲 (初入文壇)
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