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cc1000ml

金蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)

[求助] 硫酸銨沉淀的一些問(wèn)題,求高手幫忙看一下!

最近在做一種真菌胞外酶的分離,不知道蛋白的具體的性質(zhì),文獻(xiàn)報(bào)道的種類也比較多。不過(guò)大部分都采用硫酸銨沉淀后,再過(guò)柱子。
    我選擇加入固體硫酸銨(考慮到發(fā)酵液大量,加入液體體積太大了),發(fā)酵液離心去沉淀,濾紙抽濾3次,加入EDTA(終濃度為1mM),發(fā)酵液的蛋白含量在10ug/ml左右,做80%的硫酸銨沉淀,全程操作在冰水上進(jìn)行。
         在《蛋白技術(shù)手冊(cè)》中,提及加入硫酸銨的時(shí)間再10-20min之內(nèi),但是又強(qiáng)調(diào)必須等硫酸銨晶體溶解完之后加。我640ml的發(fā)酵液,盡量保證溶解之后再加,總共用了四個(gè)小時(shí)才加完。
         之前的預(yù)實(shí)驗(yàn),嚴(yán)格保證硫酸銨溶解完之后加,總共用了四天時(shí)間(每天加10個(gè)多小時(shí))。
         兩次的實(shí)驗(yàn)結(jié)果相差不大,復(fù)性之后都損失了將近95%的蛋白,比酶活也下降非常多。在加入硫酸銨的過(guò)程中,花費(fèi)四小時(shí)的實(shí)驗(yàn),出現(xiàn)了大量的白色泡沫(蛋白變性的結(jié)果),花費(fèi)四天的實(shí)驗(yàn)中泡沫則要少一些。兩次實(shí)驗(yàn)中,收集沉淀,混溶然后離心,有一半都是不溶固體(在加入硫酸銨后,有大量的絮狀沉淀出現(xiàn),應(yīng)該是這些物質(zhì))。
        有這樣幾個(gè)問(wèn)題
        1:不知道硫酸銨的加入時(shí)間以及加入速度,到底是怎么樣的?有過(guò)相關(guān)經(jīng)驗(yàn)的同學(xué)能不能給個(gè)參考~~~(這實(shí)驗(yàn)一直失敗,關(guān)于這個(gè)問(wèn)題各種凌亂...)
        2:硫酸銨沉淀這種方法對(duì)于蛋白濃度要求最好是1mg/ml,但是我發(fā)酵液蛋白濃度本來(lái)就極低,原來(lái)就想通過(guò)硫酸銨沉淀得到濃縮液的,實(shí)驗(yàn)失敗是不是與我濃度低有關(guān)?
        PS:也想過(guò)其它的方法,譬如聚乙二醇吸水(我將近1L的發(fā)酵液,所用的量實(shí)在太大了...),超濾沒(méi)有相關(guān)設(shè)備,原核表達(dá)的話,估計(jì)又要做個(gè)半年一年的了。實(shí)驗(yàn)卡這里超過(guò)兩個(gè)月了,各種糾結(jié)啊~~

[ Last edited by cc1000ml on 2012-8-10 at 11:42 ]
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徐無(wú)鬼
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dshlove

木蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)

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小丹木木: 金幣+3, MolEPI+1, 鼓勵(lì)積極應(yīng)助,解答問(wèn)題 2012-08-10 14:31:38
cc1000ml: 金幣+5, 有幫助, 感謝回帖~~ 2012-08-10 15:42:06
我覺(jué)得你的操作太費(fèi)時(shí)間了。
其實(shí),640ml的體積對(duì)生產(chǎn)來(lái)說(shuō)已經(jīng)很小了,所以,我的建議是先將硫酸銨配置成飽和溶液,然后算好要加的體積量,用蠕動(dòng)泵滴加。同時(shí)用小轉(zhuǎn)子攪拌,速度要慢。這樣就能得到比較均一的乳狀懸濁液。不會(huì)出現(xiàn)你說(shuō)的絮狀沉淀還有泡沫了,再離心取沉淀。再做下一步處理。
固體硫酸銨加入到發(fā)酵液你還要不斷攪拌,會(huì)產(chǎn)生很多泡沫,蛋白變性就無(wú)法避免了,而且,固體會(huì)導(dǎo)致局部濃度過(guò)高,形成絮狀沉淀。配置飽和溶液就能解決了。
2樓2012-08-10 14:16:18
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mitocam

新蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)

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cc1000ml: 金幣+5, ★★★很有幫助, 感謝回帖 2012-08-13 14:04:59
引用回帖:
9樓: Originally posted by cc1000ml at 2012-08-11 09:25:40
嗯,這個(gè)是可能引起實(shí)驗(yàn)失敗的因素之一。原來(lái)只是想使用硫酸銨沉淀作為一種濃縮手段,如果硫酸銨沉淀對(duì)蛋白濃度也有要求,那么像我這個(gè)濃度(10ug/ml左右),您有推薦的適合的方法么?...

我以前用過(guò)等電聚焦,蛋白質(zhì)在等電點(diǎn)附近絮凝沉淀,不過(guò)需要專門(mén)設(shè)備和時(shí)間,不推薦。用離子交換柱濃縮樣品最快最有效,而且是一個(gè)重要的分離手段。
11樓2012-08-11 15:52:43
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cc1000ml

金蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)

引用回帖:
2樓: Originally posted by dshlove at 2012-08-10 14:16:18
我覺(jué)得你的操作太費(fèi)時(shí)間了。
其實(shí),640ml的體積對(duì)生產(chǎn)來(lái)說(shuō)已經(jīng)很小了,所以,我的建議是先將硫酸銨配置成飽和溶液,然后算好要加的體積量,用蠕動(dòng)泵滴加。同時(shí)用小轉(zhuǎn)子攪拌,速度要慢。這樣就能得到比較均一的乳狀 ...

幾點(diǎn)疑問(wèn)
1:如果按照640ml的發(fā)酵液,到80%濃度,需要硫酸銨飽和溶液將近500ml,體積幾乎是翻倍了。如果加入500ml飽和溶液,那么滴加速度該如何控制呢?(如果加入固體會(huì)有明顯晶體可以看得到,可以作為一個(gè)快慢標(biāo)準(zhǔn).)
2:再者是一個(gè)過(guò)程總共需要多少時(shí)間的問(wèn)題,因?yàn)槟莻(gè)手冊(cè)中明確說(shuō)明要在10-30min內(nèi)加完,所以我個(gè)人覺(jué)得加硫酸銨的時(shí)間應(yīng)該是一個(gè)比較重要的因素.不知道您是怎樣看這個(gè)問(wèn)題的。
3:關(guān)于絮狀沉淀和泡沫的問(wèn)題。
    我在加入過(guò)程中也是使用磁力攪拌機(jī),,氣泡之所以很多而且聚集的原因主要是蛋白變性,使溶液粘度增加,攪拌產(chǎn)生的氣泡難以破碎。氣泡應(yīng)該是蛋白變性的一個(gè)表現(xiàn)。
    絮狀沉淀是在加完硫酸銨之后,靜止一小時(shí)后可以看得到的,在剛加完的時(shí)候也是一種比較均一的懸濁液。
    十分感謝您的回復(fù)~~~
徐無(wú)鬼
3樓2012-08-10 15:40:28
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dshlove

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cc1000ml: 金幣+5, 有幫助, 多謝回帖~ 2012-08-10 17:22:30
引用回帖:
3樓: Originally posted by cc1000ml at 2012-08-10 15:40:28
幾點(diǎn)疑問(wèn)
1:如果按照640ml的發(fā)酵液,到80%濃度,需要硫酸銨飽和溶液將近500ml,體積幾乎是翻倍了。如果加入500ml飽和溶液,那么滴加速度該如何控制呢?(如果加入固體會(huì)有明顯晶體可以看得到,可以作為一個(gè)快慢標(biāo) ...

針對(duì)你的問(wèn)題,我就自己知道的回答下:
1:滴加的速度基本就是一秒一到兩滴的速度,當(dāng)然你可以按照蛋白的要求,在某一規(guī)定時(shí)間內(nèi)全部加進(jìn)去。
2:其實(shí)手冊(cè)說(shuō)明只是一個(gè)大概的,一般蛋白55%情況下就能沉淀差不多了,85%能獲得最大量,所以你要結(jié)合你的蛋白,在不產(chǎn)生局部沉淀情況下盡量快。但是,我覺(jué)得加的時(shí)間不是一個(gè)特別重要的因素,我覺(jué)得濃度才是比較重要的,畢竟沉淀過(guò)程其實(shí)也是一個(gè)去雜和富集的過(guò)程。
3:產(chǎn)生氣泡,說(shuō)明你攪拌得太劇烈了。攪拌必須是有規(guī)則和溫和的。粘度增加可能不是蛋白的原因,也有可能是核酸太多了。氣泡有時(shí)候可以在樣品里補(bǔ)點(diǎn)NaCl,可以消泡的。
加完硫酸銨之后為什么要靜置?可以用轉(zhuǎn)子低轉(zhuǎn)速攪拌半個(gè)小時(shí)再去離心。
4樓2012-08-10 16:34:02
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cc1000ml

金蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)

引用回帖:
4樓: Originally posted by dshlove at 2012-08-10 16:34:02
針對(duì)你的問(wèn)題,我就自己知道的回答下:
1:滴加的速度基本就是一秒一到兩滴的速度,當(dāng)然你可以按照蛋白的要求,在某一規(guī)定時(shí)間內(nèi)全部加進(jìn)去。
2:其實(shí)手冊(cè)說(shuō)明只是一個(gè)大概的,一般蛋白55%情況下就能沉淀差不多了 ...

首先謝謝您的回復(fù)~
  我嘗試一下加硫酸銨飽和溶液的方法吧~
徐無(wú)鬼
5樓2012-08-10 17:24:31
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mitocam

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cc1000ml: 金幣+3, 有幫助, 感謝回帖! 2012-08-11 09:20:19
建議用離子交換柱濃縮一下蛋白質(zhì)(也許可以分離較純的蛋白質(zhì)如果走梯度的話)。如果不分離,蛋白質(zhì)結(jié)合上后用高鹽直接洗脫,然后用飽和硫酸銨沉淀蛋白質(zhì)。1mL和5mL的柱子就可以結(jié)合幾十毫克/mL的蛋白質(zhì)了。
6樓2012-08-10 20:44:17
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cc1000ml: 金幣+3, 有幫助, 謝謝回帖 2012-08-11 09:25:54
蛋白質(zhì)濃度過(guò)低,硫酸銨沉淀效果不佳,會(huì)損失大量的蛋白質(zhì)。
7樓2012-08-10 20:45:32
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引用回帖:
6樓: Originally posted by mitocam at 2012-08-10 20:44:17
建議用離子交換柱濃縮一下蛋白質(zhì)(也許可以分離較純的蛋白質(zhì)如果走梯度的話)。如果不分離,蛋白質(zhì)結(jié)合上后用高鹽直接洗脫,然后用飽和硫酸銨沉淀蛋白質(zhì)。1mL和5mL的柱子就可以結(jié)合幾十毫克/mL的蛋白質(zhì)了。

是這樣的,我實(shí)驗(yàn)計(jì)劃是把蛋白進(jìn)行濃縮之后,然后再進(jìn)行離子交換柱分離。印象中,離子交換柱是做后期分離用的,也能用來(lái)濃縮么?
徐無(wú)鬼
8樓2012-08-11 09:21:56
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引用回帖:
7樓: Originally posted by mitocam at 2012-08-10 20:45:32
蛋白質(zhì)濃度過(guò)低,硫酸銨沉淀效果不佳,會(huì)損失大量的蛋白質(zhì)。

嗯,這個(gè)是可能引起實(shí)驗(yàn)失敗的因素之一。原來(lái)只是想使用硫酸銨沉淀作為一種濃縮手段,如果硫酸銨沉淀對(duì)蛋白濃度也有要求,那么像我這個(gè)濃度(10ug/ml左右),您有推薦的適合的方法么?
徐無(wú)鬼
9樓2012-08-11 09:25:40
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mitocam

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cc1000ml: 金幣+5, ★★★很有幫助, 謝謝回帖 2012-08-13 14:04:15
引用回帖:
8樓: Originally posted by cc1000ml at 2012-08-11 09:21:56
是這樣的,我實(shí)驗(yàn)計(jì)劃是把蛋白進(jìn)行濃縮之后,然后再進(jìn)行離子交換柱分離。印象中,離子交換柱是做后期分離用的,也能用來(lái)濃縮么?...

因?yàn)槟愕臉悠敷w積大而蛋白質(zhì)濃度很稀,通過(guò)離子交換柱后蛋白質(zhì)結(jié)合在柱上,然后用小體積高鹽溶液洗脫,就是一個(gè)濃縮過(guò)程。你如果用超濾膜濃縮大體積樣品,還挺費(fèi)勁的。

只要能分離純化蛋白質(zhì),任何組合都可以,不必拘泥于順序先后。有些酶還需保存在硫酸銨中以保存活性呢。
10樓2012-08-11 15:49:25
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