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植物ROS
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| 我測魚和蚯蚓ROS時要取線粒體懸浮液前處理是這樣的：魚是取肝臟研磨成液，1000g離20min，取上清，20000g也是離20min，蚯蚓是直接研磨成液，然后剩余步驟同魚。現(xiàn)在我要做小麥的，我查過植物線粒體的提取方法，太麻煩，而且取完線粒體會對后面的實(shí)驗(yàn)有影響，所以想有沒有必要那么麻煩呢，我想再采取魚和蚯蚓那樣的前處理方法來做植物的可行性有多少？大家來說說看。 |
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但是文獻(xiàn)所用的取線粒體的緩沖液中含牛血清蛋白，這樣我按文獻(xiàn)的方法取到線粒體再重懸浮后去測蛋白會對我的蛋白含量有影響�。ㄒ�?yàn)槲蚁乱徊綔yROS時要先測下蛋白含量來確定酶液量和探針的量） 我查的文獻(xiàn)取線粒體的緩沖液及步驟是這樣的，你幫我看看他哪一步或者哪一個試劑是用來破除細(xì)胞壁的？（假如他也沒有破除細(xì)胞壁的步驟那我用動物的方法也不可以嗎？簡單的研磨再差速離心取不到植物的線粒體？）你幫我看看哈，謝謝你我不懂啊。。。 勻漿緩沖液:50mmol/LTris-HCl， 25mmol/LEDTA，pH8.0， 1.3mo/LNaCl，0.2%BSA，使用前再加L-半胱氨酸和β-巰基乙醇。 稱取小麥幼苗葉片, 加入5倍體積預(yù)冷的勻漿緩沖液, 用預(yù)冷的研缽充分破碎組織, 經(jīng)6 層紗布過濾, 濾渣加入3 倍體積的勻漿緩沖液 繼續(xù)破碎,兩次濾液合并后分裝于15mL 離心管。將濾液用高速冷凍離心機(jī)1000 g離心10min; 取上清液2000 g 離心15 min, 并重復(fù)此步操作。將得到的上清液18000 g 離心15 min, 棄上清,得到粗線粒體沉淀。向每管沉淀中加入5mL 預(yù)冷的勻漿緩沖液, 并將沉淀重懸浮, 18000 g 離心15min, 充分棄掉上清液, 得到較純的線粒體沉淀。 |
3樓2012-09-06 10:04:18
starseacow
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2樓2012-09-05 19:35:09
starseacow
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【答案】應(yīng)助回帖
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慚愧，昨天回答你問題的時候沒有多想想。 首先，關(guān)于細(xì)胞壁，我采取的方案是用石英砂研磨，但這個和動物細(xì)胞直接研磨估計(jì)差別不大，所以細(xì)胞壁不是太大的影響因素。而質(zhì)體存在，由于都是用差速離心，估計(jì)也不是大影響因素。你的問題實(shí)際上集中在能否換用動物細(xì)胞的緩沖液，是么？我依然覺得不可以，尤其是BSA，我認(rèn)為它的作用是作為競爭性底物削弱蛋白酶的作用，這樣可以保證分離的線粒體完整。同時，BSA的存在還可以抑制脂肪酸及其他脂類物質(zhì)對線粒體的毒害。所以如果要研究線粒體功能，必須如此。 至于測定線粒體ROS產(chǎn)生，我看過的文章不多，基本上都是用H2DCFDA，不知道你計(jì)劃怎么做？ 另外，你的方法中用到1.3 mol/l氯化鈉，我看到的方法多為甘露醇/蔗糖+BSA+EDTA+Tris-Hcl，為了維持等滲，氯化鈉需要這么高的濃度么？你的方法出自什么文獻(xiàn)？ |
4樓2012-09-06 19:09:54
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我參照的是一篇碩士論文，他也有文獻(xiàn)發(fā)出，題目是：小麥線粒體DNA 的高效提取方法 作者是：李文強(qiáng) 我測ROS用的也是DCFH-DA法，我就是研磨完樣品，重懸浮，然后去測蛋白含量，根據(jù)已經(jīng)測好的蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線，計(jì)算出所需酶液，然后再根據(jù)方法里酶液和探針的關(guān)系算出需要加的探針含量，然后水浴加熱，再去用熒光分光光度計(jì)測。 其實(shí)我也不是想測定線粒體里的ROS，我就是想測整個的ROS，但是師哥師姐們測蚯蚓ROS時就是這樣差速離心說是取線粒體，我就照著他們說的變動了下找到植物取線粒體的方法，再和我們已有的DCFH-DA法相結(jié)合來測ROS。 師哥師姐們測魚和蚯蚓的ROS時的緩沖液就是簡單的磷酸緩沖液，并沒有加什么BSA來保證線粒體完整，而且最后也測出來了，而且剛發(fā)了篇SCI，我感覺我們這種測ROS就是大體測一下吧，看看總體有什么趨勢，并不需要測的很精確。 我也問過師哥師姐說你們這么簡單的差速離心下就能取到線粒體嗎？他們也說不上來，反正他們測ROS就是這么簡單的進(jìn)行下前處理就可以測，現(xiàn)在我做植物想按他們的來，粗略的測下ROS的情況，要是按文獻(xiàn)那種方法來取線粒體太麻煩而且那個緩沖液由于加了BSA對我的結(jié)果有影響 |
5樓2012-09-06 19:26:09
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