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wuxiaoyan06金蟲 (小有名氣)
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[求助]
請(qǐng)問如何設(shè)計(jì)兼并引物
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| 本人最近在學(xué)習(xí)怎么設(shè)計(jì)兼并引物,通過比對(duì)20種該基因的氨基酸序列找到了它的保守區(qū)域,用primer5設(shè)計(jì)引物簡(jiǎn)并度太高不知道怎么取舍,不知道用什么軟件設(shè)計(jì)兼并引物好,各位可不可以給些見意和方法啊,謝謝了! |
金蟲 (正式寫手)
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理論上說:由氨基酸回導(dǎo)核酸序列,同時(shí)考慮到細(xì)菌使用密碼子的偏愛性,以減少兼并度,但是這樣得到的兼并引物的兼并密碼子比較多,我建議你可以先從網(wǎng)上找到已經(jīng)報(bào)道的比較近的幾種菌的序列,然后比對(duì),設(shè)計(jì)兼并引物,這樣做沒問題,我覺得還比較簡(jiǎn)便,因?yàn)槲揖褪沁@么做的,也沒用primer軟件! 另外3端最好不是兼并密碼子,你可以在網(wǎng)上查查看。 下面是網(wǎng)上找到的詳細(xì)的簡(jiǎn)并引物設(shè)計(jì)原則和Primer5.0 設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物的方法可以參考下: 簡(jiǎn)并引物設(shè)計(jì)原則: 1. 選擇高度保守的序列作為引物。如果可能的話,選擇在基因家族內(nèi)和不同種屬間都保守的序列。 2. 選擇兼并度最小的序列 a. 含有色氨酸和甲硫氨酸的肽段為首選,因?yàn)槠涿艽a子是唯一的 b. 盡可能不用含有亮氨酸、精氨酸、絲氨酸的肽段。 3. 若引物序列高度簡(jiǎn)并,利用脊椎動(dòng)物基因組中CpG二核苷酸的較低豐度,可望降低兼并度。并結(jié)合密碼子優(yōu)先表,或在有兼并度的地方引入次黃苷來降低兼并度。 4. 引物的3‘端殘基盡可能使用確定殘基。但令人吃驚的是,當(dāng)G、C或T發(fā)生錯(cuò)配時(shí),3’端的T殘基相對(duì)保持中立。 5. PCR產(chǎn)物的合適長度為200~1000bp。 6. 如果蛋白中有兩個(gè)以上的區(qū)域高度保守,可構(gòu)建幾套PCR引物,以便使用“巢式”PCR來增加特異性。 PCR反應(yīng)條件 1. 退火溫度 總的來說,退火溫度越低,非特異性擴(kuò)增的可能性越大。低至37度的退火溫度也可被采用于高度簡(jiǎn)并的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增。Touchdown PCR也可以減少錯(cuò)誤擴(kuò)增 2. 擴(kuò)增的循環(huán)數(shù) 過多循環(huán)數(shù)導(dǎo)致非特異性帶的產(chǎn)生;可以每5個(gè)循環(huán)取一定樣品來檢測(cè)擴(kuò)增的特異性 3. 降溫時(shí)間 不同的PCR儀效率不同。較長的降溫時(shí)間有利于錯(cuò)配雜交的產(chǎn)生 4. PCR緩沖液成分 主要在于Mg++離子的濃度。 Primer5.0 設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物的方法: 首先把各個(gè)CDs序列分別存儲(chǔ)為fasta格式,然后在 file-open-DNA sequence 里邊把各個(gè)序列依次加入,然后點(diǎn)擊align,比對(duì)完之后再點(diǎn)擊primer,調(diào)整參數(shù)進(jìn)行search或手工拉動(dòng)選擇引物。表現(xiàn)的形式是非簡(jiǎn)并性的,但是你從下邊可以看得出來哪個(gè)堿基是非簡(jiǎn)并性的,再手工調(diào)整。其他原則同一般的簡(jiǎn)并引物設(shè)計(jì)原則,如3‘避免簡(jiǎn)并性等等。 還可以在線用codehop設(shè)計(jì),如果需要這種方法,我可以告訴你怎么搞。 |

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