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[求助]
求解救,被蛋白質困擾。。
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我做的蛋白質是假單胞菌分泌的胞外酶,提取方法直接離心降解培養(yǎng)基手機上清液,棄掉菌體沉淀。降解培養(yǎng)基的主要成分是葡萄糖,牛肉膏(微量),硝酸銨,磷酸鹽緩沖液~現(xiàn)在正在做SDS-PAGE,已經做了接近一個月,還是有各種問題,已經沒有信心做出來了,求指教,求解救~問題主要有以下幾點: 1.胞外蛋白含量特別少,一般只有20ug/mL左右,有時候還檢測不出來,所以蛋白質的條帶特別不清楚。不知道有沒有比較有效的濃縮方法? 現(xiàn)在使用過超濾管,但是選擇孔徑大小上,我選擇了最小的,3KD,離心一個小時濃縮效果不明顯。不知道超濾管的會不會損失蛋白 還嘗試過TCA沉淀方法,但是跑電泳之前加入loading煮沸5min之后沉淀不溶解,離心手機上清液上樣,條帶不好看,而且也不清楚,不知道用到的藥品,三氯乙酸,脫氧膽酸鈉,DTT,丙酮會不會影響電泳效果 2 接下來還要做二維電泳,做二維電泳的老師說,上清液中含糖對電泳影響特別大,建議我除糖,而且要過柱子,不知道要選擇什么填料的柱子,是用什么緩沖液洗脫,需要多大的培養(yǎng)液,這種方法可行性高嗎?這方面一點也不了解,還求大神指教。不知道過柱子之后蛋白純度會不會提高? 現(xiàn)在都快愁白頭了,我們組之前沒有師兄師姐做過,所以特別苦悶。。 |
分子生化實驗經驗積累 |
新蟲 (正式寫手)
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1. 濃縮,可選用超濾或TCA沉淀,TCA沉淀是做SDS-PAGE濃縮比較經典的方法了。20 ug/ml的話可以取1-2 ml進行TCA沉淀,然后上樣。沉淀不溶解?你肉眼能看到管底有沉淀?說明太多了。我通常用的量都是肉眼使勁看才能看到一點點沉淀的。TCA不會影響SDS-PAGE,但是對二維電泳就不清楚啦。 2. 除糖?這倒是很有挑戰(zhàn)性。小的糖肯定能通過透析或者超濾除去。但是很大的糖想除掉還真不容易。LZ可以測一下糖含量嘛,再做決定 |
新蟲 (正式寫手)
捐助貴賓 (正式寫手)
生命科學博士
金蟲 (小有名氣)
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