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sars37捐助貴賓 (小有名氣)
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[求助]
求確認(rèn)雙內(nèi)切酶體系
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TAKARA的Hind III 和EcoR I 酶,目的基因在1000bp左右,連接在2736bp的T-Vector上,PCDNA在3000多bp左右,現(xiàn)用兩個(gè)限制性內(nèi)切酶對(duì)T質(zhì)粒和PCDNA進(jìn)行酶切,T質(zhì)粒的濃度在5.5ng/ul,PCDNA的濃度在0.8ng/ul,準(zhǔn)備的酶切體系如下: T質(zhì)粒 稀釋5倍后取1ul 10*M buffer 2ul Hind III 1ul EcoR I 1ul h2o 15ul total 20ul 37° 過(guò)夜 PCDNA 1ul 10*M buffer 2ul Hind III 1ul EcoR I 1ul h2o 15ul total 20ul 37° 過(guò)夜 求大神指導(dǎo)修改體系,還有幾個(gè)小問(wèn)題: 過(guò)夜反應(yīng)是否必要?2小時(shí)酶切可以嗎? 如果想要多回收DNA,加大上樣量,把體系改成40ul可以嗎? 據(jù)說(shuō)酶切好后,純化電泳時(shí)做的膠不能加EB,要在跑完電泳后放在EB中泡10MIN,不然會(huì)影響后面的連接,是這樣嗎? |
銀蟲(chóng) (小有名氣)
| 體系本身沒(méi)有什么意見(jiàn);每一種酶的活力均不一致,具體的還是參照說(shuō)明書(shū)來(lái)看看(不過(guò)我至少還是切3小時(shí)的,不是迫不得已不會(huì)過(guò)夜,怕影響結(jié)果);加大上樣量是可以的,但是請(qǐng)?jiān)谂渲企w系時(shí)注意混勻,如果覺(jué)得單獨(dú)一個(gè)管中體系過(guò)大,你可以將它們多分裝一些,到時(shí)候加樣的時(shí)候組合起來(lái)加也可以的(一般膠回收我們習(xí)慣是50的體系點(diǎn)一個(gè)大孔,不是40的),還有就是點(diǎn)樣的時(shí)候盡可能在一個(gè)孔中多加一些,而不是增加孔數(shù),這是為了增加你的條帶亮度;染膠還有掃膠、切膠的時(shí)候一定要盡快完成,防止目的片段發(fā)生改變。當(dāng)然,少染一會(huì)條帶可能會(huì)有些暗,其實(shí)只要是大小正確,趕快切就好了。至于你是在膠里加EB還是跑完以后再染EB,這本身沒(méi)有什么分別(我都試過(guò),沒(méi)什么問(wèn)題)。 |
捐助貴賓 (小有名氣)
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說(shuō)明書(shū)上的活性確認(rèn):在50ul反應(yīng)液中,37°溫度下反應(yīng)1小時(shí),將1ug的DNA完全分解的酶量定義為1個(gè)活性單位U。一般反應(yīng)體系: EcoR I 1ul 10*buffer 2ul DNA ≤1ug h2o up to 20 ul 50ul的全部加在1.75mm的孔?有一次加40ul都會(huì)溢出來(lái)。。。50ul體系的話這樣可以嗎? T質(zhì)粒 稀釋5倍后取2ul 10*M buffer 5ul Hind III 2ul EcoR I 2ul h2o 39ul total 50ul 37° 過(guò)夜 PCDNA 2ul 10*M buffer 5ul Hind III 2ul EcoR I 2ul h2o 39ul total 50ul 37° 過(guò)夜 |
銀蟲(chóng) (小有名氣)
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說(shuō)明書(shū)說(shuō)1小時(shí),那么就可以按照1小時(shí)來(lái)操作。制膠的梳子我們這里有三種規(guī)格,你說(shuō)的1.75的可能是最小的那一種,我試過(guò)用這一種加15,那么我常常酶切30,點(diǎn)滿滿兩個(gè)孔。我說(shuō)的50的膠槽一橫排就只有13的大孔,點(diǎn)50無(wú)壓力的。如果你那邊只有小孔梳子的話,你也可以多制備一些體系,大不了多點(diǎn)幾個(gè)孔就是了。不過(guò)還是盡可能加大每一孔的樣品量,讓它們變得亮一些,你好在沒(méi)染夠的前提下也能發(fā)現(xiàn)你的目的條帶。 |
捐助貴賓 (小有名氣)
新蟲(chóng) (初入文壇)
捐助貴賓 (小有名氣)
| 加大反應(yīng)體系到40ul,把你的各個(gè)反應(yīng)液同比例擴(kuò)大2被就行了。你的模版量太少了,我們提出質(zhì)粒500ng/ul 都要切2-3ul。酶切不是說(shuō)時(shí)間越長(zhǎng)越好,建議考慮5小時(shí),太長(zhǎng)容易吧載體切碎,太多切不開(kāi)。 |
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