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diguoxueye金蟲(chóng) (正式寫手)
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關(guān)于果蔬中過(guò)氧化物酶與過(guò)氧化氫酶活力測(cè)定 已有1人參與
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我在做POD和CAT酶活力測(cè)定時(shí)發(fā)現(xiàn)了一些異常現(xiàn)象。我是采用測(cè)吸光值測(cè)定結(jié)果的。發(fā)現(xiàn)吸光值呈現(xiàn)異常變化情況。比如測(cè)CAT時(shí)發(fā)現(xiàn),有的吸光值不斷的下降,有的樣品的吸光值先在測(cè)定的最初1min內(nèi)急劇下降,隨后,有的是下降速度明顯降低,有的是呈增加的趨勢(shì)。還有的樣品是吸光值在前1分鐘內(nèi)先升高,隨后,呈現(xiàn)規(guī)律的下降趨勢(shì)。測(cè)定POD也出現(xiàn)了同樣的問(wèn)題。但是,以前測(cè)定POD的時(shí)候,曲線的R平方值非常大,基本上都是0.99以上的。現(xiàn)在和以前的最大差別在于,兩次的樣品不同,但是都屬于同一個(gè)品種,現(xiàn)在測(cè)定的酶活比以前測(cè)定的小很多。 補(bǔ)充一點(diǎn):我的分離方式采用的是過(guò)濾,而不是離心。主要是因?yàn)榘l(fā)現(xiàn)離心的效果比較差,又沒(méi)有高速離心機(jī)。最后發(fā)現(xiàn)過(guò)濾的溶液還是比較澄清的。 下面的是POD的測(cè)定方法 7、過(guò)氧化物酶活力測(cè)定 (1) 試劑 0.02mol/L KH2PO4溶液,0.1molPH6.0磷酸緩沖液,反應(yīng)混合液(取0.1mol/LPH6.0磷酸緩沖液50mL,加入愈創(chuàng)木酚0.028mL,于磁力攪拌器加熱攪拌至溶解,待溶液冷卻后,加入30%過(guò)氧化氫0.019mL,混合均勻,于冰箱中保存)。 (2) 試驗(yàn)方法 a) 粗酶液的提。悍Q取1.0g植物組織,放入研缽中,加入少量石英砂和0.02mol/L KH2PO4溶液5mL,冰浴研磨成勻漿,于4000r/min下離心15min,上清液轉(zhuǎn)入25mL容量瓶中。所剩沉淀再用5mL0.02mol/L KH2PO4溶液提取一次,上清液并入容量瓶,定容至25mL,保存在冰箱備用。 b) POD測(cè)定:取比色杯2只,一只加入反應(yīng)混合液3mL和0.02mol/L KH2PO4溶液1mL,作為調(diào)零空白;另一只加入反應(yīng)混合液3mL和上述粗酶液1mL(如酶活力過(guò)高可稀釋),立即開(kāi)啟秒表計(jì)時(shí),于分光光度計(jì)470nm處比色測(cè)定吸光度,每隔1min讀數(shù)一次。 c) 結(jié)果計(jì)算:以每分鐘內(nèi)OD470變化0.01為1個(gè)POD活力單位,計(jì)算活力: POD活力(U/gFW/min)= 式中:△OD470——反應(yīng)時(shí)間內(nèi)吸光度的變化量; W——植物組織鮮重(g); t——反應(yīng)時(shí)間(min); Vt——提取酶液總體積(mL); Vs——測(cè)定時(shí)取用酶液體積(mL)。 CAT測(cè)定采用 樣品提取是采用的磷酸鹽緩沖液,測(cè)定吸光值時(shí),2.9mLTris-HCl緩沖液+0.05mL750mmol/L過(guò)氧化氫+0.05mol/L粗酶液,在240nm下測(cè)定吸光值。每30s測(cè)定一次吸光值。 |

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為什么酶夜提取時(shí)用的是KH2PO4,而不是混合液中的緩沖液?用同樣的緩沖液可以嗎? 發(fā)自小木蟲(chóng)Android客戶端 |
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