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[求助]
關于PLGA微球制備的問題 已有3人參與
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本人第一次做微球,有好多問題想求助于各位大神,各位見笑了。 用復乳溶劑揮發(fā)法制備載蛋白的PLGA微球,外水相用PVA, 用紫外法測定蛋白的含量。做蛋白標曲的時候,是不是要用相應濃度的PVA溶液做空白啊, 我是這樣做標曲的,大家看這樣對嗎? 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 蛋白 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 ml 5%PVA 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 ML 水 0.9 0.8 0.7 0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 0 ml 按照文獻的步驟做到揮發(fā)完二氯甲烷后,離心,然后取上清液,測游離蛋白的吸光度,根據(jù)標曲計算游離藥物的含量, 包封率=(總的投藥量-游離藥物量)/總投藥量*100% 這時,用紫外測游離蛋白的吸光度時,是不是也應以相應濃度的PVA溶液做空白對照呢?紫外特別不穩(wěn)呀,有時計算包封率都成了負值…… 現(xiàn)在腦子感覺轉不過彎了,希望各位給以指正指導。謝謝啦 |
新蟲 (小有名氣)
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首先,你制作標曲時,你要確定你標曲的精密度,明白嗎?后面的結果很容易出現(xiàn)負值的原因是:前面的標曲適用方位太大了,例如適合蛋白的濃度為1-100 mg/ml,但你后面測游離時由于被稀釋了很多倍,導致游離藥物的濃度可能只有0.1,此時你把它帶入標曲就很容易出現(xiàn)問題,這是不可以的。 對于要不要加PVA溶液做空白,我的建議是前后保持一致吧,如果加整個實驗都加,如果不加,整個實驗就都別加。如果沒有明顯的吸光度,和水一樣,就不用加了 |
送紅花一朵 |
2樓: Originally posted by wpk9904 at 2016-03-30 08:12:24 首先,你制作標曲時,你要確定你標曲的精密度,明白嗎?后面的結果很容易出現(xiàn)負值的原因是:前面的標曲適用方位太大了,例如適合蛋白的濃度為1-100 mg/ml,但你后面測游離時由于被稀釋了很多倍,導致游離藥物的濃度 ... 你好,謝謝回復,我還是有些疑問。 我做標曲時,蛋白的濃度從小到大是 0.0077、0.0154、0.0231、0.0308、0.0385、0.0462、0.0539、0.0616、0.0693 標準曲線回歸方程是y=7.0519x+0.04472 然后制備微球,考察單因素,比如,用3%PVA做外水相時,就取1ml 3%PVA做空白對照,加考馬斯亮藍5ml,然后取上清液,測定吸光度。有時測出的吸光度為0.034,根本就沒法帶入方程呀。而且吸光度在0.2-0.8才穩(wěn)定。而我測得的吸光度都是0.0幾的。超過0.2的計算出來的游離藥量就超過總的投藥量了。 ![]() ![]() ![]() 不好意思,表述的可能不清楚,希望能幫我指正哪些步驟做錯了。謝謝了 |
新蟲 (小有名氣)
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3樓: Originally posted by 丁勤奮 at 2016-03-31 16:13:00 你好,謝謝回復,我還是有些疑問。 我做標曲時,蛋白的濃度從小到大是 0.0077、0.0154、0.0231、0.0308、0.0385、0.0462、0.0539、0.0616、0.0693 標準曲線回歸方程是y=7.0519x+0.04472 然后制備微球,考察單因 ... 你所述說的情況我以前遇到過。的確吸光度過低時沒有辦法的,超出了紫外分光光度計的使用范圍。所以針對該儀器我沒有很好的建議。但還是有一些替代辦法的。 我不知道你們實驗室有沒有核酸蛋白檢測儀,就是與凝膠色譜柱相連的一種儀器。它的原理和紫外分光光度計的原理是一樣的,而且測定你這個絕對沒問題,有的話恭喜你。 沒有的話你只能換其他包封率的測定方法了。高效液相也可以,就是太麻煩。 |
至尊木蟲 (知名作家)
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