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proteinwang銅蟲 (正式寫手)
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[交流]
【求助/交流】考馬斯亮蘭法(Bradford法)測(cè)定蛋白濃度事宜請(qǐng)教! 已有7人參與
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前段時(shí)間做考馬斯亮蘭法(Bradford法)測(cè)定蛋白濃度時(shí),測(cè)定OD595nm處的值比較低,現(xiàn)向大家請(qǐng)教一下在此試驗(yàn)過程中的注意事項(xiàng)。 1、考馬斯亮蘭G―250染料試劑的配制過程中,考馬斯亮蘭G―250必須先溶于95%的乙醇后,再添加85%的磷酸,最后定容嗎?是不是可以把考馬斯亮蘭G―250,95%的乙醇和85%的磷酸一塊放到容器中,然后溶解后定容呢? 2、用1.0mg/ml的標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液給各試管分別 加入:0、0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1ml,然后用無離子水補(bǔ)充到0.1ml。最后各試管中分別加入5.0ml考馬斯亮蘭 G―250試劑,每加完一管,立即在旋渦混合器上混合,5min后測(cè)定其OD595,測(cè)得值比較低,且基本沒有規(guī)律性,不知道是什么原因? 請(qǐng)成功做過相關(guān)實(shí)驗(yàn)的高手給予解答! |
蛋白相關(guān) |
銅蟲 (初入文壇)

木蟲 (正式寫手)
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看你的過程應(yīng)該是在比色皿里做的,我是用酶標(biāo)儀做的,直接在96孔板里做,你的方案我在網(wǎng)上也找到過,最后再96孔板里做的,也不是很好,后來把總體積減少了,200μl的染液,30μl的蛋白溶液,測(cè)得的結(jié)果線性還是不錯(cuò)的;當(dāng)然有時(shí)候你做出趨勢(shì)曲線后,發(fā)現(xiàn)要測(cè)得的蛋白濃度無法計(jì)算,就是說你的稀釋度還要降低,所以一般最少要做個(gè)0.1以及1.0的標(biāo)準(zhǔn)曲線 另外,我配制的染液根本沒定容,直接用量筒量取體積數(shù),做的結(jié)果線性還是不錯(cuò)的,最后的濃度也跟我用其他的方法相差不大; 建議再做一次,本來這個(gè)方法就不是很精確的,看看文獻(xiàn),多是BCA法,為什么不出現(xiàn)這個(gè)方法呢?想想就明白了,這個(gè)方法也就平時(shí)做起來簡(jiǎn)單些,要發(fā)paper還是的得試劑盒了 |
木蟲 (正式寫手)

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