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wcx蝸牛無蟲 (小有名氣)
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[求助]
質粒構建
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作為實驗新手,近期要構建質粒,有些問題要向各位高手請教。 1、pcr產物和載體的酶切體系怎么確定,有什么需要注意的。是不是環(huán)狀載體比線性片段難切。 2、目的片段和載體雙酶切后連接體系的確定,目的片段和載體的摩爾比多少為好。每次連接時是不是都要測兩者的濃度,根據公式再計算出兩者的用量。連接時有什么需要注意的。我用T4連接酶。 3、構建質粒有一系列的工作,各位在各個步驟中有什么特別需注意的。 |
木蟲 (正式寫手)

銀蟲 (小有名氣)
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1.酶切體系,你可以參照限制性內切酶的說明書,我一般都是載體30ul, 兩種酶各1ul, buffer 5ul, 加水至50ul.注意:不同的限制性內切酶可能buffer也不一樣。我都是環(huán)狀質粒切的,效果還不錯。我是設計帶有限制性內切酶位點的引物去擴增目的基因,然后把這個基因連接到T載體上,然后再酶切的。 2 目的片段和載體的連接中比例大約為3/1左右。 3 構建質粒時最重要的是要保證你的感受態(tài)是OK的,兩種質粒酶切3-6小時候,直接去跑膠,回收,立即連接。放置4度冰箱過夜,第二天下午轉化,涂板。 這個板的篩選壓力設置得小點,挑斑時多挑一些。 |
無蟲 (小有名氣)
金蟲 (小有名氣)
銀蟲 (小有名氣)
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gs目的基因與p PIC9K質粒載體雙酶切 EcoRI和NotI雙酶切長度1400左右的目的基因體系: 10×H Buffer 2 μl 0.1% BSA 2 μl 0.1% TritonX-100 2 μl EcoRI和NotI DNA ≤1 μg 滅菌水 up to 20 μl 雙切pic9K質粒 10×H Buffer 2 μl 0.1% BSA 2 μl 0.1% TritonX-100 2 μl EcoRI和NotI 質粒 ≤1 μg 滅菌水 up to 20 μl 37℃ 1hr (寶生物) 酶切后取電泳檢測,并濃縮回收 2. T4連接酶連反應 10×T4 DNA Ligase Buffer 2.5 μl DNA 片段 約 0.3 pmol 載體 DNA 約 0.03 pmol T4 DNA Ligase 1 μl dH2O up to 25 μl 16℃過夜反應 |
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