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[交流]
N-末端 氨基酸測(cè)序——轉(zhuǎn)膜問題
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各位蟲友: 小蟲用SDS-PAGE識(shí)別到一個(gè)分子量110kDa左右(0.75mm)膠,只是想知道N-末端20個(gè)氨基酸順序,不需要保持其活性,之后送到測(cè)序公司進(jìn)行氨基酸識(shí)別。已經(jīng)在網(wǎng)上和自己實(shí)踐后進(jìn)行了轉(zhuǎn)膜實(shí)驗(yàn),效果不是很理想。想和蟲友共同探討和完善轉(zhuǎn)膜方案,以便后續(xù)試驗(yàn)順利進(jìn)行: 我用PVDF膜進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,然后準(zhǔn)備進(jìn)行N-端氨基酸測(cè)序. 1. SDS-PAGE是還原電泳,用考馬斯藍(lán)染色條帶清晰。 1. PVDF膜放在甲醇里漂洗,去除膜中氣泡,便于蛋白轉(zhuǎn)移。 3. 轉(zhuǎn)膜緩沖液用CAPS pH11。 2. 制作三明治。用60V或100v電壓轉(zhuǎn)了一個(gè)小時(shí),染色用立春紅S幾分鐘。 可能細(xì)節(jié)還有問題,期望蟲友和有經(jīng)驗(yàn)的老師提供建議,提供詳細(xì)方案和建議。之后再進(jìn)行整理,以便實(shí)驗(yàn)順利進(jìn)行! |
經(jīng)典資源帖 | 蛋白質(zhì)生物學(xué)實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn) |
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(1)配制CAPS[3-(環(huán)己氨基)-1-丙磺酸,3-(cyclohexylamino)-1-propanesulfonic acid]電印跡緩沖液:10×CAPS(100mmol/L):取 CAPS 22.13g,加去離子水至900mL,用2mol/L NaOH (約20mL)將pH值調(diào)至11.0,然后定容至1L,貯存于4oC。 (2)CAPS電印跡緩沖液(含10%甲醇的1×CAPS):取10×CAPS 200 mL,加甲醇200 mL,去離子水1600 mL。 (3)取出PVDF膜(Positively charged nylon,Polyvinylidene fluoride,聚偏二氟乙烯膜),用甲醇浸泡數(shù)秒鐘,然后放入CAPS電印跡緩沖液中。(注:以后的操作須防止PVDF膜干涸。如果膜變干,須重復(fù)本步驟的操作;CAPS電印跡緩沖液中的甲醇濃度范圍是0-20%,一般甲醇濃度高的緩沖液對(duì)低分子量蛋白的轉(zhuǎn)移效果好,而甲醇濃度低甚至不含甲醇的緩沖液則有利于高分子量蛋白的轉(zhuǎn)移。) (4)取出電泳凝膠,在CAPS緩沖液中浸泡5-10分鐘。 (5)將用于電印跡實(shí)驗(yàn)的濾紙和海綿放入電印跡緩沖液中浸泡一下,然后按海綿、濾紙、PVDF膜、凝膠、濾紙、海綿的次序?qū)㈦娪≯E夾層裝好,并放入小型電轉(zhuǎn)槽中,用50V恒壓條件下跑空膠2-2.5小時(shí)預(yù)電泳后再上蛋白樣品進(jìn)行電泳分離。在50V恒壓條件下(100-170mA)于室溫下進(jìn)行電印跡轉(zhuǎn)移,轉(zhuǎn)移時(shí)間為0.5-2小時(shí)。(注:務(wù)必小心排盡凝膠和PVDF膜之間的氣泡。上述轉(zhuǎn)移條件適用于Bio-Rad小型電轉(zhuǎn)槽和分子量不太大的蛋白。在不同的實(shí)驗(yàn)中,應(yīng)根據(jù)具體的電轉(zhuǎn)移裝置和具體蛋白適當(dāng)調(diào)整電轉(zhuǎn)移條件。例如對(duì)70kD以上的蛋白質(zhì)須延長(zhǎng)轉(zhuǎn)移時(shí)間。) (6) 取出PVDF膜并用去離子水略為漂洗,用甲醇浸泡數(shù)秒鐘,然后進(jìn)行染色。 (7) 考馬斯亮藍(lán)染色,可將0.1%考馬斯亮藍(lán)R-250溶于40%甲醇/1%乙酸,染色30-50秒(切勿超過1分鐘),用50%甲醇脫色(注意勤換脫色液),并用去離子水充分洗滌,然后即可剪下待測(cè)序的條帶,送上;瞪锛夹g(shù)公司進(jìn)行蛋白質(zhì)端測(cè)序(蛋白質(zhì)序列測(cè)序系統(tǒng):ABI PROCISETM492cLC)。 |
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