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tiancailijia金蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)
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請(qǐng)問(wèn)有沒(méi)有人做小腸的組織切片
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請(qǐng)問(wèn)有沒(méi)有人做過(guò)小腸的組織切片,石蠟及冰凍切片的,求具體的步驟,大家給點(diǎn)意見(jiàn)吧![]() ![]() [ Last edited by xinmor on 2012-5-22 at 11:10 ] |
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金蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)
金蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)
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我做了,一般步驟,是先取材,一般大小1.0cm,然后是用福爾馬林(一般,看要求還可以用酒精、甲醛固定液)固定,我們實(shí)驗(yàn)室一般固定12小時(shí),或者6h都可以了,然后就是脫水,用梯度酒精(-75%-85-95-100-100%,時(shí)間都是不同的,100的一共不能夠超過(guò)過(guò)2小時(shí),其他的可以半天左右,或者3小時(shí)都可以)脫水,然后透明,用二甲苯(過(guò)兩次,每次一個(gè)小時(shí)差不多)透明,透明后侵石蠟(記住石蠟要60度恒溫保存,石蠟也要侵至少2次,每次一小時(shí)左右吧),過(guò)后就是石蠟直接包埋了 冰凍切片的話厚度也要控制在1cm以內(nèi),冰凍切片不用包埋,直接切片就可以了,但是也要固定 |
鐵桿木蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)
| 我沒(méi)做過(guò),但我找了一篇文獻(xiàn),可能會(huì)對(duì)你有幫助。下載地址:https://115.com/file/anl0jux7#冰凍切片的制作體會(huì).pdf |
鐵桿木蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)
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石蠟包埋切片技術(shù) 實(shí)驗(yàn)?zāi)康模?br /> 1、學(xué)習(xí)石蠟包埋切片技術(shù)的基本原理和基本步驟; 2、掌握石蠟包埋切片技術(shù)。 實(shí)驗(yàn)原理: 大家在生物學(xué)實(shí)驗(yàn)時(shí),曾經(jīng)觀察過(guò)動(dòng)物組織和植物組織的切片。通過(guò)光學(xué)顯微鏡,我們可以觀察到細(xì)胞內(nèi)部的結(jié)構(gòu)(例如細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)、肌肉組織的橫紋等)、細(xì)胞相互間的聯(lián)系以及組織的構(gòu)成等。那么,如何來(lái)制作這種切片呢?其過(guò)程是比較復(fù)雜的,我們利用3—4次實(shí)驗(yàn)來(lái)學(xué)習(xí)組織切片的制作。 大家知道,我們要在顯微鏡下研究生物體的內(nèi)部結(jié)構(gòu),在自然狀態(tài)下是無(wú)法觀察的,因?yàn)檎麄(gè)動(dòng)、植物體大部分都是不透明的,不能直接在顯微鏡下觀察,一定要經(jīng)過(guò)特殊的處理,使要觀察的材料先減少它的厚度和體積,使光線能透過(guò)才能用顯微鏡觀察。通常應(yīng)用的有兩種方法:一種是非切片法,即用物理或化學(xué)的方法將生物體組織分離成為單個(gè)細(xì)胞或薄片,例如我們?cè)谏飳W(xué)實(shí)驗(yàn)曾做過(guò)口腔上皮的觀察、洋蔥鱗莖表皮的觀察。這種方法的不足之處在于細(xì)胞彼此間相互的聯(lián)系不一定觀察到。另外一種為切片法,即用刀將標(biāo)本切成薄片。 非切片法比較簡(jiǎn)單,一學(xué)就會(huì),我們這里不作介紹。 切片法也分徒手切片法和切片機(jī)切片法。最簡(jiǎn)單的切片法是將新鮮植物材料直接用刀切成薄片,稱之為徒手切片法。切片機(jī)切片法是用特殊的切片機(jī)來(lái)切片,切片的厚度可薄到幾個(gè)微米。因此,切片機(jī)的發(fā)明與應(yīng)用也是細(xì)胞學(xué)誕生的重要因素。 切片機(jī)切組織用的也是刀(切片刀),所要切的組織要有一定的軟硬度,如刀切肉(新鮮、冷凍)。但大部分生物材料比較柔軟,所以為了能切出薄片,必須先使所切材料有一定的軟硬度。一些包埋劑可以達(dá)到這個(gè)目的,如石蠟,它融化時(shí)可滲入到組織內(nèi)部;凝固時(shí),使整個(gè)組織有一定的軟硬度,正好能切出很薄的切片,故稱為石蠟包埋切片法。另外還有火棉膠包埋切片法(火棉膠做包埋劑)、冰凍切片法(使組織冷凍到一定的硬度)等。其中最常用的切片方法還是石蠟包埋切片法,我們這里重點(diǎn)學(xué)習(xí)石蠟包埋切片技術(shù)。 實(shí)驗(yàn)器材: (一)小鼠、小廣口瓶、標(biāo)簽、量筒、燒杯、95%酒精、無(wú)水酒精、蒸餾水、手術(shù)刀、剪刀、鑷子、平皿、石蠟塊、濾紙、甲醛液、苦味酸、冰醋酸、移液管、洗耳球。 (二)恒溫箱、融蠟、紙盒、燙板、支架、酒精燈、火柴、小鑷子、濾紙。(擦載玻片、磨刀、液體石蠟)。 (三)手術(shù)刀、木板、酒精燈、火柴、鋸條、木塊、塑料板、切片刀、切片機(jī)、毛筆、小鑷子、載玻片、蛋白甘油、恒溫水浴箱、溫度計(jì)、大白盤。 實(shí)驗(yàn)步驟: 制作小鼠肝、脾、腎、小腸等切片。 1、取材:取材是指從動(dòng)物或植物體上割取所要觀察的組織材料,比如植物的莖、葉,動(dòng)物的肝臟、小腸等。 取材時(shí)應(yīng)注意以下幾點(diǎn): (1)新鮮:在割取材料時(shí)應(yīng)愈快愈好,否則動(dòng)植物體的細(xì)胞成分、結(jié)構(gòu)及分布等就會(huì)發(fā)生改變。 (2)防止人為損傷:如生拉硬拽、擠壓等,以免出現(xiàn)人為損傷。 (3)大。0.5 cm × 0.5 cm × 0.2cm。 2、固定:機(jī)體死亡或組織離體后,組織細(xì)胞由于血液供應(yīng)停止,即可發(fā)生缺氧,導(dǎo)致生物氧化過(guò)程停止。相反,細(xì)胞內(nèi)的無(wú)氧酵解酶類活躍,使組織內(nèi)蛋白質(zhì)、糖、脂肪降解,導(dǎo)致組織發(fā)生自溶。另外,組織也可因污染細(xì)菌而發(fā)生腐敗。因此,為了使細(xì)胞和組織結(jié)構(gòu)保持生活時(shí)的狀態(tài),必須進(jìn)行適當(dāng)?shù)墓潭ā9潭ǖ哪康脑谟诒4娼M織內(nèi)細(xì)胞的形態(tài)、結(jié)構(gòu)及其組成,使其與生活時(shí)相似。 固定組織的物質(zhì)——固定劑——具有凝固或沉淀組織蛋白的作用,因此能抑制酵解酶類的活動(dòng)和細(xì)菌的繁殖,從而呈現(xiàn)對(duì)組織的固定作用。 固定劑的種類很多,最常見(jiàn)的有乙醇、甲醛、冰醋酸、苦味酸、鉻酸、重鉻酸鉀、氯化汞和鋨酸等8種。各種固定劑對(duì)蛋白質(zhì)、脂肪、糖等作用不同,因此,單一的固定劑不能保存所有的成分,故多用混合固定劑。 各種書(shū)籍對(duì)固定劑的介紹特別多,如化學(xué)性質(zhì)、固定的原理、固定組織的優(yōu)缺點(diǎn)等,由于時(shí)間的所限,我們這里不作詳細(xì)介紹,僅介紹幾種常見(jiàn)的固定液及其配方和用途。 (1)10%福爾馬林液:1份甲醛液 + 9份蒸餾水 市場(chǎng)上出售的甲醛液約含37-40%的甲醛,10%福爾馬林液實(shí)際上僅含3.7-4.0%的甲醛。 適用范圍:各種組織。但是經(jīng)10%福爾馬林液固定的組織,細(xì)胞核染色較好,而細(xì)胞質(zhì)染色較差。 處理:組織塊一般固定16-24h,長(zhǎng)時(shí)間亦可,甚至可用來(lái)長(zhǎng)期保存組織塊。短時(shí)間固定的組織塊不需水洗,可直接轉(zhuǎn)入70%酒精脫水。 (2)Bouin氏液:苦味酸飽和水溶液(1.22%) 75ml (15) 甲醛液 25ml (5) 冰醋酸 5ml (1) 適用范圍:各種動(dòng)物組織及植物組織的根尖,是動(dòng)物組織良好的固定液。 處理:固定24h,也可在此液長(zhǎng)期保存。流水沖洗或不經(jīng)水洗直接入70%酒精脫水。 (3)Zenker氏液: 甲液:氯化汞(升汞) 5g 重鉻酸鉀 2.5g 硫酸鈉 1g 蒸餾水 100ml 乙液:冰醋酸 5ml 使用前將甲、乙兩液混合。 適用范圍:為一般動(dòng)物組織的優(yōu)良固定液,經(jīng)其固定的組織,細(xì)胞核及細(xì)胞質(zhì)染色頗為清晰。 處理:固定時(shí)間為16-24h,然后流水沖洗一夜以洗去氯化汞,再入70%酒精脫水。切片染色前要用碘液除去汞沉淀。 (4)Gendre氏液: 苦味酸飽和酒精液(8.96g/100ml95%酒精) 85ml 甲醛液 10ml 冰醋酸 5ml 適用范圍:用于檢查動(dòng)物組織中的糖原(因?yàn)樘窃苡谒?br /> 處理:固定3-6h,直接轉(zhuǎn)入95%酒精脫水。 (5)Carnoy氏液: 無(wú)水乙醇 60ml 三氯甲烷 30ml 冰醋酸 10ml 適用范圍:用于檢查動(dòng)物組織的核酸、糖原等。 處理:固定2-6h,直接轉(zhuǎn)入95%酒精脫水。 還有多種多樣的其它固定液。固定液的選擇應(yīng)根據(jù)所要固定的材料以及檢查的目的而定。 3、沖洗:材料自固定液中取出后,需立即沖洗,使其中所有的固定液全部除去,以妨礙染色。 有些固定液,如10%福爾馬林液、Bouin氏液固定的材料,若時(shí)間較短的話可不必沖洗。但時(shí)間過(guò)長(zhǎng)亦需沖洗。 沖洗的方法:組織塊放在瓶?jī)?nèi),膠管插入瓶?jī)?nèi)接通自來(lái)水,瓶口用紗布包住。流水沖洗一夜,即能達(dá)到?jīng)_洗的目的。 4、脫水:脫水的目的在于使組織中的水分完全除去。因?yàn)榻M織塊將來(lái)要在石蠟 中包埋,而水和石蠟是不相溶的。必須經(jīng)過(guò)脫水后,才能進(jìn)入包埋階段。 常用的脫水劑有乙醇、丙酮、正丁醇等,最常用的還是乙醇。利用脫水劑吸水的特性,在各級(jí)濃度脫水劑中逐漸吸取組織中的水分。乙醇脫水的過(guò)程一般從70%乙醇開(kāi)始,經(jīng)80%、90%、95%、100%(二次)而完成脫水過(guò)程。每向后轉(zhuǎn)移前,須先將組織塊上的液體用吸水紙吸干,以免影響后續(xù)乙醇的濃度。 脫水時(shí)應(yīng)注意:(1)在高濃度或無(wú)水乙醇中,每級(jí)停留的時(shí)間不宜太長(zhǎng),否則可使組織收縮變脆,影響切片;(2)如需過(guò)夜,應(yīng)停留在70%乙醇中,也可長(zhǎng)期保存,可防止因時(shí)間倒不開(kāi)而影響后續(xù)步驟。 5、透明:脫水后是否可以進(jìn)入包埋呢?但因脫水劑與石蠟也不相溶,因此在包 埋前,需要一種既能溶于脫水劑又能溶于石蠟的物質(zhì)——透明劑——來(lái)起中間置 換作用。 所以,透明的目的在于使組織中的乙醇或丙酮被透明劑所代替,以使石蠟?zāi)芎茼樌剡M(jìn)入組織中。另外,還能增強(qiáng)組織的折光系數(shù),故稱透明劑。 透明劑的種類很多,常用的有二甲苯、甲苯、苯等。二甲苯為最常用的透明劑,二甲苯能溶于醇及醚,亦為石蠟溶劑,但不溶于水,它的透明力很強(qiáng)。 透明過(guò)程:一般經(jīng)過(guò)1/2二甲苯-1/2無(wú)水乙醇,兩次二甲苯。 透明徹底的標(biāo)準(zhǔn):胃、腸、結(jié)締組織等比較透明;肝、腎、心、肌肉等組織呈暗紅色浸油狀態(tài),則說(shuō)明脫水、透明良好。如果組織進(jìn)入二甲苯30min以后還不變色,或中心有白色,說(shuō)明水分未脫凈,應(yīng)返回?zé)o水乙醇繼續(xù)脫水。透明這一步至關(guān)重要,若透明時(shí)間不足,則石蠟進(jìn)不去,不能切片;若透明時(shí)間過(guò)長(zhǎng),則使組織收縮變脆、變硬,切片易碎。這一步要靠經(jīng)驗(yàn)。 6、浸蠟:浸蠟就是將石蠟透入整個(gè)組織的過(guò)程。 所謂石蠟包埋切片法,是用石蠟來(lái)浸透、包埋組織塊,再進(jìn)行切片和染色的 制片方法。 石蠟為最常用的包埋劑,有幾種不同熔點(diǎn)的石蠟,通常所用的石蠟的熔點(diǎn)為54-58℃。 浸蠟過(guò)程:在60℃的溫箱內(nèi)已融化的石蠟中經(jīng)兩次各1h,使石蠟浸透組織。 浸蠟時(shí)注意溫度不宜過(guò)高,浸蠟時(shí)間亦不宜過(guò)長(zhǎng),否則會(huì)引起組織變硬、變脆,影響切片。 7、包埋:包埋就是被石蠟浸透的組織連同溶化的石蠟,一起倒入一定形狀的器皿(如紙盒、平皿)中,然后使其凝固成蠟塊的過(guò)程。 包埋的過(guò)程:(1)折疊紙盒; (2)用酒精燈加熱溫臺(tái)及紙盒; (3)往紙盒中倒入溶化的石蠟; (4)放入組織塊,切面向下,并撥正位置; (5)蠟塊凝固。 從取材到包埋是一個(gè)連續(xù)的過(guò)程,往往連續(xù)幾天,如果沒(méi)有計(jì)劃、沒(méi)有完善的安排,就有可能和其他上課時(shí)間發(fā)生沖突,或造成半夜出勤。有時(shí)單憑記憶,把前后順序顛倒或超過(guò)了規(guī)定時(shí)間,會(huì)造成實(shí)驗(yàn)失敗。因此需預(yù)先編制一個(gè)日程表。 注意事項(xiàng):(1)動(dòng)作要迅速;(2)融蠟別滴到桌面、地上。 8、切片:在包埋后,就可以進(jìn)行切片。在切片之前,還需對(duì)包埋好的組織塊進(jìn)行修整,并貼附于木塊上,才能進(jìn)行切片。 修塊:以每一組織塊為單位,用小刀將組織塊大體修成長(zhǎng)方形或梯形,組織的周圍須留1-2mm寬的蠟邊。 固著:用酒精燈燒熱金屬片,將組織塊切面的對(duì)立面稍燙熔一下,并立即貼于木塊上。 切片機(jī)的構(gòu)造: 切片機(jī)是用來(lái)做各種組織切片的一種儀器,其樣式很多,性能也不一樣,一般可分為兩大類型,即滑行式切片機(jī)與旋轉(zhuǎn)式切片機(jī)。我們使用的是旋轉(zhuǎn)式切片機(jī)。其主要結(jié)構(gòu)分為3部分:(1)控制切片厚度的微動(dòng)裝置;(2)供裝置切片刀的夾刀部分;(3)供裝置組織塊的夾物部分。旋轉(zhuǎn)輪每旋轉(zhuǎn)一次,微動(dòng)裝置就按所調(diào)節(jié)好的切片厚度以水平方向?qū)⒔M織塊向前推進(jìn)一片的厚度。 切片操作: (1)固定切片刀:刀刃向上,保持水平。調(diào)好角度,一般在4-6度。 (2)固定組織塊。 (3)調(diào)整所需要的切片厚度:一般在6-10微米。 (4)移動(dòng)持刀器,或拔開(kāi)齒輪上的牽引鉤,前后轉(zhuǎn)動(dòng)齒輪以移動(dòng)組織塊固定器,調(diào)節(jié)組織塊表面和刀刃的距離,以剛要接近時(shí)為止。 (5)調(diào)整組織塊與刀刃之間的角度和位置:組織塊的切面及上下邊須與刀刃平行。 (6)粗切:右手搖輪,左手轉(zhuǎn)動(dòng)齒輪,慢慢將組織塊切到組織本身。 (7)切片:右手轉(zhuǎn)動(dòng)搖輪,轉(zhuǎn)一圈可切下一片,切第二片與第一片連在一起,即成連續(xù)切片。左手用鑷子或毛筆提起切片的下端,輕輕向自身方向拽,使切片成連續(xù)的帶狀。 (8)展片:停止切片,右手用另一支毛筆輕輕將蠟帶跳起,靠刀刃的一面向下,慢慢接觸40-45℃的水面,借助水的表面張力使其在水面展開(kāi)。如有小的皺褶,用小鑷子輕輕分開(kāi)。應(yīng)注意:水溫過(guò)高,易使切片全部融化;水溫過(guò)低,切片不宜伸展。 (9)貼片:即將切片貼在載玻片上。先將連續(xù)切片分成一片或小段。將載玻片1/2處均勻涂一層薄薄的蛋白甘油(等量的雞蛋清和甘油混合而成,防止脫片。切勿涂得過(guò)多。,將載玻片垂直插入水中,以涂有蛋白甘油的面貼近組織片,提起載玻片使組織片貼附在載玻片上。用小鑷子將切片擺在載玻片1/3和2/3的交界處,并擺正位置。然后在52-60℃恒溫箱烤干。 整個(gè)石蠟包埋切片技術(shù)至此全部結(jié)束。 |
木蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)
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病理石蠟切片的制作包括石蠟組織塊制作、切片制作和染色。 其制作過(guò)程是:取材→固定→沖洗→脫水→透明→浸蠟→包埋→切片→貼片→烤片→脫蠟→復(fù)水→染色→脫水→透明→封藏。 (一)石蠟組織塊制作 1、取材和固定: 固定的目的在于保存組織內(nèi)細(xì)胞原有的結(jié)構(gòu)和形態(tài),使其與生活時(shí)相似,因此要求固定的材料越新鮮越好。處死動(dòng)物后應(yīng)立即切取組織塊,組織塊的大小以厚度不超過(guò)5mm為宜,并快速投入固定液中。固定液有10%甲醛溶液、Bouin氏固定液、FAA固定液等。固定時(shí)間為數(shù)小時(shí)至24小時(shí)(需視組織塊的大小而定)。 2、沖洗: 經(jīng)固定的材料,可根據(jù)不同的固定液,分別用水或酒精沖洗,以洗去固定液,否則固定液留在組織會(huì)有礙染色。 3、脫水: 柔軟并含有多量水分的組織是易切成薄片的,故必須增加組織的硬度。石蠟切片法就是使石蠟滲入組織,以達(dá)到支持增硬的作用。但水與石蠟是不相混合的,因此,在浸蠟、包埋前須將組織中的水分完全除去,這一步驟即為脫水。 常用的脫水劑是酒精。脫水時(shí),先從低濃度的酒精開(kāi)始,然后,遞增濃度,直至無(wú)水酒精。具體方法是,將材料經(jīng)30%--50%--70%酒精→80%酒精→90%--95%酒精(Ⅰ)→95%酒精(Ⅱ)→無(wú)水酒精(Ⅰ)→無(wú)水酒精(Ⅱ),各級(jí)酒精1-2小時(shí)。小的組織每級(jí)脫水時(shí)間30-40min就可以。否則材料不能透明,影響石蠟的浸入,致使難以切片。 注意:在低濃度酒精中和高濃度酒精中都不能時(shí)間太長(zhǎng),要過(guò)夜,就在70%酒精中。長(zhǎng)時(shí)間在低濃度酒精中容易使材料解體降解。長(zhǎng)時(shí)間在高濃度酒精中容易使組織變脆。 4、透明: 酒精與石蠟不能混和,因此,脫水后的材料在浸蠟前,還必須經(jīng)過(guò)透明。透明劑既可替代組織中的酒精,又能溶解石蠟,以利石蠟的滲入。二甲苯是常用的一種透明劑。 將脫水后的材料經(jīng)1:1無(wú)水酒精與二甲苯→二甲苯(Ⅰ)→二甲苯(Ⅱ),各級(jí)時(shí)間為0.5-2小時(shí),務(wù)使組織達(dá)到透明為止。小的組織每級(jí)15-30min就可以。 注:若在二甲苯中組織周圍出現(xiàn)霧狀,說(shuō)明脫水不徹底,要返回脫水至完全再透明。 5、浸蠟: 將已透明的材料移入熔化的石蠟內(nèi)浸漬即為浸蠟。其目的是去除組織中的透明劑,而使石蠟滲入整個(gè)組織,獲得一定的硬度和韌度,以便切成薄的切片。 先將裝有56-58℃石蠟的三個(gè)蠟杯放在熔蠟箱內(nèi)熔化,并使熔蠟箱的溫度保持恒定(約58℃),切勿太高或太低。然后將透明了的材料放入石蠟與二甲苯1:1的蠟杯(Ⅰ)→石蠟(Ⅱ)→石蠟(Ⅲ)。浸蠟時(shí)間視材料大小而定,一般總的浸蠟時(shí)間為2-4小時(shí)左右。 小的組織每步20-30min就可以。 石蠟要至少溶2次,才會(huì)韌性比較好。好的石蠟有助于切片。 6、包埋: 將浸蠟后的材料包埋于石蠟中,并使它凝固成蠟塊,這一過(guò)程稱為包埋。 包埋常用銅制包埋框,將已熔化的石蠟倒入,隨即將已浸蠟的材料放入其中,應(yīng)注意切面朝下,位置放正。待石蠟全部凝固后,推出蠟塊。 我們用的是小模具,如果大點(diǎn)的組織,就需要大的模具,或者做成大的石蠟包埋塊。 7 切片 切片時(shí),最重要的是刀片要好,溫度合適。溫度太高容易卷片,皺片。 所以氣溫高時(shí),要將包了組織的石蠟塊放冰上,或四度冰箱冷卻再切。或開(kāi)空調(diào)降溫。 8 展片 水溫在37-40度。 9 貼片 烤片 一般在37度過(guò)夜,或者65度一小時(shí) 對(duì)于抗原性比較弱的,最好是37度過(guò)夜。 10 脫蠟復(fù)水 將烤好的片放入二甲苯(Ⅰ)二甲苯(Ⅱ)各5-10min脫蠟 100%酒精(Ⅰ)(Ⅱ)--95%--90%--80%—70%酒精各3-5min PBS中三次,每次3-5min 11 做組化或染色 固定的注意事項(xiàng) 1).固定液的用量 固定液的用量一般為組織塊體積的20倍左右,并考慮組織塊內(nèi)所含水分對(duì)固定液濃度的影響 2).固定液的配制 應(yīng)盡量使用新鮮配制的固定液,以現(xiàn)配現(xiàn)用最為理想. 3).固定的時(shí)間 固定的時(shí)間應(yīng)視組織塊的大小,部位,性質(zhì),種類固定液的性質(zhì),滲透力,以及固定時(shí)的溫度而確定.一般情況下固定24h即可達(dá)到固定要求 固定液 (一)單純固定液 1).甲醛(formaldehyde) 固定濃度 10%~20%水溶液 固定時(shí)間 12~24h 2).乙醇(ethyl alcohol) 固定濃度 80%~90% 固定時(shí)間 依組織塊大小和乙醇濃度而定一般4~12h 3).冰乙酸(acetic acid) 固定濃度 2%~5% 固定時(shí)間 很少單獨(dú)使用 4).升汞(mercury bichloride) 固定濃度 5%~7%水溶液 固定時(shí)間 不超過(guò)24h 5).苦味酸(picric acid) 固定濃度 飽和水溶液 固定時(shí)間 不超過(guò)24h 6).重鉻酸鉀 固定濃度 1%~3%水溶液 固定時(shí)間 24h至數(shù)天 7).丙酮(acetone) 固定濃度 原液 固定時(shí)間 冷固定(4度2~8h) 8).鉻酸 固定濃度 0.5%~1% 固定時(shí)間 24h 9).四氧化鋨 固定濃度 1%~2%雙整水溶液 固定時(shí)間 24h (二)混合固定液 1).中性甲醛 配制方法 40%甲醛120ml,蒸餾水880ml,磷酸二氫鈉4g,磷酸氫二鈉13g 固定時(shí)間 24h 適用組織 實(shí)驗(yàn)室常備固定液,適用于多種組織的固定 2).乙醇-甲醛液(a-f液) 配制方法 95%乙醇90ml, 40%甲醛10ml 固定時(shí)間 組織塊固定4~12h,鋪片固定5~10min 適用組織 皮下組織中的肥大細(xì)胞,組織化學(xué)中的對(duì)糖原的固定等 3).bouin氏液 配制方法 苦味酸水溶液75ml, 40%甲醛25ml,冰乙酸5ml 固定時(shí)間 12~24h 適用組織 實(shí)驗(yàn)室常備固定液,特別適用固定皮膚組織 4).苦味酸-硫酸液 配制方法 飽和苦味酸水溶液100ml,硫酸2ml 固定時(shí)間 2~4h 適用組織 胚胎組織 5).carnoy液 配制方法 冰乙酸10ml,氯仿30ml,無(wú)水乙醇60ml 固定時(shí)間 20~40min,較大組織塊不超過(guò)2~4h 適用組織 糖原,染色體和尼氏體 6).helly氏液 配制方法 重鉻酸鈉2.5g,升汞5g,蒸餾水100ml,使用時(shí)去上液95ml加入40% 甲醛5ml 固定時(shí)間 12~24h 適用組織 骨髓,脾,肝等 7). altmann氏液 配制方法 5%重鉻酸鈉10ml,2%鋨酸水溶液10ml用時(shí)配 固定時(shí)間 24h 適用組織 脂肪組織,線粒體,神經(jīng)細(xì)胞 8).verhoeff氏液 配置方法 40%甲醛10ml,95%乙醇48ml,蒸餾水36ml,苦味酸 1g 固定時(shí)間 48h 適用組織 眼球 9).zenker氏液 配制方法 重鉻酸鈉2.5g,升汞5g,冰醋酸5ml,蒸餾水100ml 固定時(shí)間 24h 適用組織 實(shí)驗(yàn)室常備固定液,適用于多種組織的固定 二、石蠟切片 石蠟切片不僅是常規(guī)病理中的重要切片形式,也是免疫組化研究中較常用的切片形式,它能滿足免疫組化的連續(xù)切片要求。為了便于染色及觀察,切片時(shí)應(yīng)注意:①連續(xù)切片時(shí)應(yīng)按順序分離及貼片,不應(yīng)顛倒;②貼片時(shí)應(yīng)距載玻片一端至少1cm,一般靠一邊,以利于顯色安全;③用于免疫組織化學(xué)染色的蠟溫應(yīng)為56—58℃,切片水溫在40℃左右,應(yīng)先置于冷水中,然后再移人熱水中,這樣可以使切片能順利展平;④切片刀要求快,切片要薄,無(wú)刀痕和皺褶,在染色時(shí)可減少非特異染色;⑤烤片時(shí)要注意,抗原性較強(qiáng)的組織可在60℃烤3—8h,抗原較弱的組織可于37℃恒溫箱內(nèi)過(guò)夜;⑥切片如需長(zhǎng)期保存,可置于4℃或室溫下,千萬(wàn)不可脫蠟后4℃保存,因脫蠟后失去了對(duì)抗原決定簇的保護(hù)。 1.鉻礬明膠液 試劑:鉻礬 0.5g 明膠(Gelatine) 5g H2O ~1000ml 方法:在1000ml的燒杯或燒瓶中,以500~800ml H2O加溫溶解明膠,待其完全溶解后,再加入鉻礬。注意溫度過(guò)高易使明膠燒糊,包被玻片時(shí)最好控制水溫在70℃。如有明顯殘?jiān),過(guò)濾后使用。 2.甲醛-明膠液 試劑:40%甲醛 2.5ml 明膠 0.5g 蒸餾水 至100ml 配制方法:用少許蒸餾水(約80ml)加熱溶解明膠,待完全溶化后,加入甲醛,最后補(bǔ)充蒸餾水至100ml混勻即可。 3.多聚賴氨酸(Poly-L-Lycine,PLL) 試劑:多聚賴氧酸 5g 蒸餾水 ~1000ml 配制方法:稱取PLL,溶于H2O,充分混合即可,此液濃度為0.5%,可適當(dāng)稀釋配成0.01~0.5%濃度。4℃保存,也可-20℃?zhèn)溆谩LL可反復(fù)冰凍,效果無(wú)明顯影響,工作液常再稀釋10~50倍。 4.Vectabond試劑 該試劑是Vector公司新進(jìn)推出的一種新型玻片粘附劑。該試劑與一般的粘附劑不同,它是通過(guò)對(duì)玻璃表面起化學(xué)修飾作用,改變其表面的化學(xué)物理特性,使組織切片牢固地貼于玻璃片上,貼上后不易脫落,保留時(shí)間較久。一個(gè)試劑盒(7ml |
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