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提取植物RNA時槍頭等需不需要用DEPC水處理 已有1人參與
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準(zhǔn)備研究經(jīng)過染毒處理后的植物葉片中某種酶基因表達量的變化,打算這樣做:先提取新鮮植物材料(蠶豆)葉片中的RNA,然后反轉(zhuǎn)錄cDNA,再去熒光定量。由于沒做過這方面實驗,好多不懂的地方,想請教一下高手一些問題。 1. 提RNA前所有的耗材怎么處理呀,新鮮的植物組織是不是必須用液氮研磨?用到的槍頭離心管到底需不需要用0.1%DEPC水處理?DEPC好像吸入毒性挺大的還致癌什么的怪嚇人。。。用到的玻璃器皿也需要DEPC水浸泡嗎?我提RNA用的是試劑盒,上面注意事項上只說:玻璃器皿應(yīng)在使用前于180℃高溫下干烤4小時,塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10分鐘,用水徹底沖洗后高壓滅菌。沒提到DEPC處理的事。 2. 因為我剛做怕提的RNA質(zhì)量不好不敢反轉(zhuǎn)錄,所以想先跑下電泳看看。我是這么做的把提取的RNA樣品取10μl, 用RNase-Free Water(試劑盒自帶)稀釋到100μl,其余先放入-20冰箱,我想問上樣的時候加多少μl的RNA樣品和多少μl的loding buffer好?這個loding buffer用跑DNA電泳的可以嗎?電泳緩沖液用1*TAE可以嗎,需要DEPC處理嗎? |

專家顧問 (職業(yè)作家)
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好像很久沒見你發(fā)帖了,實驗進展如何? 1 植物組織最好液氮研磨。所有實驗器具需要DEPC處理,不過不用太擔(dān)心,注意保護自己就好。槍頭如果買進口的無RNase污染的,可以直接用,國產(chǎn)的還是DEPC處理一下比較放心。我的經(jīng)驗,不太注意的話,RNA很可能降解。試劑盒上寫的方法可以試試,不過我自己傾向于用DEPC。 2 Loading buffer的使用參考其具體說明書。單純看提取RNA質(zhì)量,認真清洗好電泳槽,使用新配置的TAE和膠,不需要DEPC處理。 |

新蟲 (初入文壇)
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1 植物組織需用液氮研磨,因要保持低溫;槍頭、離心管等不需DEPC處理,120℃高溫滅菌40分鐘,60℃烘干即可,但最好分出專門用于RNA操作的槍頭、離心管,不與DNA耗材混用; 2 RNA稀釋后,上樣時加0.5-1μg左右即可,樣品量過多易過載,loding buffer按DNA用量即可,loding buffer和電泳用品最好DNA、RNA區(qū)分開,但用法和用量相同。 [ 發(fā)自手機版 http://www.gaoyang168.com/3g ] |


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新蟲 (初入文壇)

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