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[求助]
小鼠脾細胞Th流式CD4染色極少怎么破… 已有2人參與
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感覺做Th流式CD4+一直非常少,求大神講解,下面是大概的流程… 淋巴細胞分離液處理的Balb/c正常小鼠脾細胞,大概1*10^6/ml,24孔板每孔1ml做刺激: PMA 50ng/ml, Ionomycin 1ug/ml, Golgistop 照BD說明書加的,刺激時間一般6~8h。第二天收了以后胞外染色、固定穿透、胞內染色。固定穿透用的是ebioscience的permeabilization buffer和fixation/ permeabilizaton concentrate,流式抗體都是ebioscience的(CD4,IL4, IFNr)。重復了幾次下來都存在CD4+極少甚至染不上(0.5%以下,很多0.1%不到)。 請問這種染色效率是否正常?看到過一種說法是刺激物會引起CD4的表達量減少和內吞,這種情況在實驗過程里應該怎么避免?CD3+CD8-作為CD4+的替代標記這種做法在小鼠細胞實驗里是否能夠得到認可? 發(fā)自小木蟲Android客戶端 |
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鐵桿木蟲 (正式寫手)
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PMA刺激4小時以后CD4數(shù)量就開始下降,過夜培養(yǎng)數(shù)量會降的更低。如果必須過夜培養(yǎng),可以利用CD3CD8反向射門來分析你所需要的細胞群。 發(fā)自小木蟲Android客戶端 |
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