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【資料】植物總蛋白提取方法
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一提取植物總蛋白(以植物花粉為例): 1.三氯乙酸法(TCA)/丙酮(acetone)提取花粉總蛋白質(zhì) 花粉在liquid nitrogen中研磨成粉末,用含10%TCA和1%DTT的acetone沉淀蛋白質(zhì),-20度 2個(gè)小時(shí)(必要時(shí)過夜),4度 25000g離心20min后去上清,用含1%DTT的acetone溶液懸浮沉淀,-20度 1個(gè)小時(shí),再次離心去上清,將真空干燥的沉淀在等電聚焦緩沖液中(8M urea,20mmDTT,4%CHAPS,2%ampholyte,PH:3-10) 20度震蕩1小時(shí),20度25000g離心20min,收集上清,沉淀再次用IEF緩沖液離心收集上清,可為后續(xù)試驗(yàn)做準(zhǔn)備。 2.苯酚(phenol)提取法 花粉在liquid nitrogen中研磨成粉末,添加1ml的phenol(tris 8.8 緩沖液)繼續(xù)研磨5min,加提取緩沖液(0.1mol/L 8.8 Tr i s –HCl,5mmEDTA,20mmDTT,30%sucrose)。將樣本轉(zhuǎn)移至離心管中,4度 震蕩30min,25000g離心10min,將上層的phenol層轉(zhuǎn)移進(jìn)另一個(gè)試管,將下邊的水相層加1ml的phenol(tris 8.8 緩沖液)及提取緩沖液,震蕩,離心,將再次收集到的phenol與前邊收集的混合,加5倍體積的0.1 M ammonium acetate in 100%methanol,在-20度震蕩沉淀蛋白質(zhì),必要時(shí)過夜,4度 25000g離心10min,將沉淀用0.1 M ammonium acetate in 100%methanol及80% acetone各洗兩次, 含10mmDTT的80% acetone再洗一次,在每一步中蛋白沉淀都要完全重懸— -20度震蕩30min,4度 25000g離心20min,洗劑完成后,沉淀真空干燥,IEF buffer提取蛋白質(zhì),如方法1。 3.直接IEF buffer提取蛋白質(zhì) 直接IEF buffer提取蛋白質(zhì),花粉在liquid nitrogen中研磨成粉末,然后加入IEF buffer(8M尿素,20mmDTT,4%CHAPS,5mmEDTA,5mmTris base,2%ampholyte,PH:3-10).如方法1。 4.Tris-HCL緩沖液法 花粉在liquid nitrogen中研磨成粉末,加入Tris-HCL緩沖液(50mm,8.8,Tris-HCL, 5mmEDTA,20mmDTT,100mmKCL,2mmPMSF),在融化后,混合液在4度放30min, 25000g離心20min,收集上清,對(duì)沉淀重新提取一次,將收集到的上清混合,用5倍體積的100%丙酮沉淀蛋白質(zhì),-20度孵育2h,離心后,用80%的丙酮洗劑沉淀2次,IEF buffer重懸沉淀,方法如1 5.利用Bradford試劑法估測提取的總蛋白濃度,并調(diào)整濃度行蛋白電泳,-80度保存。 本人翻譯的,具體方法流程見附件原文。[ Last edited by xjtuwgz on 2011-9-28 at 17:24 ] · [ Last edited by silicare on 2012-11-6 at 07:52 ] |
葉蛋白 |
至尊木蟲 (職業(yè)作家)
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頂下! 謝謝共享! 我這也有一些此類實(shí)驗(yàn)方法的總結(jié)經(jīng)驗(yàn)啥的! http://www.gaoyang168.com/bbs/viewthread.php?tid=4197411&fpage=1 這里我帖子里面推薦的這個(gè)實(shí)驗(yàn)方法網(wǎng)站就挺不錯(cuò),也推薦給樓主! |
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