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landscape37新蟲 (小有名氣)
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原核表達(dá)IPTG誘導(dǎo)后樣品處理
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有幾個問題搞不清楚,請高手給點經(jīng)驗 1.IPTG誘導(dǎo)后的2,4,6..小時后還需要測OD嗎?那要保證上樣量一致來看哪個時期蛋白表達(dá)量最高,是根據(jù)取相同菌液,離心,然后加相同細(xì)胞裂解液,取相同量跑電泳嗎?要等一起處理樣品的話,如何保存呢? 2.關(guān)于周質(zhì)空間的分離:我的載體有信號肽,所以我想分離周質(zhì)空間跑電泳,看我的蛋白表達(dá)情況,有一個protocol裂解液直接用200mM Tris-HCL+20%蔗糖,pH8.0(菌液離心,裂解液重懸沉淀,注意用槍頭吹打,不能渦旋,置于冰上1個小時,其間shake幾次,然后4度15000g離心30min,取上清即得周質(zhì)部分)。 但是我看其他很多細(xì)胞裂解液都是要有破裂細(xì)胞壁的EDTA還有溶菌酶,才能得到周質(zhì)空間,上面的做法可行嗎?我參照的下面是另外一個普通的protocol: [3].取菌液離心,轉(zhuǎn)移上清,上清液中加入等體積冰浴冷的10% TCA,冰上放置20min,高速離心后棄上清,用1ml甲醇洗滌沉淀2次,標(biāo)記為A,即菌液部分。 [4].在細(xì)菌沉淀中加入100μl 細(xì)胞裂解液重懸細(xì)菌,置冰上10min。 [5].高速離心后移出上清液,將上清液標(biāo)記為B,即周質(zhì)部分。 [6].在沉淀中加入100μl 0.1mM Tris-HCl (pH8.0)重懸沉淀,經(jīng)干冰和37℃水浴反復(fù)凍溶3次,高速離心后移出上清液,將上清液標(biāo)記為C,可溶性胞質(zhì)部分。 [7].在沉淀中加入100μl 0.1M Tris-HCl (pH8.0)重懸沉淀,標(biāo)記為D,即包涵體部分。 ps:我覺得第六步中的0.1mM Tris-HCL濃度是不是太低了,應(yīng)該是0.1M吧? |

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