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[求助]
求助!大腸桿菌轉(zhuǎn)化不長(zhǎng)菌落~
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我做的是空載體的大腸桿菌轉(zhuǎn)化,然后挑單菌落提取質(zhì)粒。 現(xiàn)在已經(jīng)做了三次,但是都沒(méi)有出結(jié)果~ 材料如下: 空載體是5微升質(zhì)粒干粉加進(jìn)40微升Eluent(Eluent是Takala公司質(zhì)粒提取試劑盒中的)稀釋,初始濃度為160.5ng/μl,然后分別稀釋10倍(測(cè)試后濃度為15.0ng/μl)和100倍(7.0ng/μl,應(yīng)該是濃度太低,測(cè)得不精確)。 感受態(tài)是Takala的DH5α 具體步驟如下: 1。分別取以上三種各1μl加入到50μl感受態(tài)中,冰浴30min,用槍頭輕輕混勻。 2。在42℃中放置45s。 3。放入冰浴中2min。 4。在操作臺(tái)中加入500μlLB培養(yǎng)基無(wú)抗體。 5。在30攝氏度培養(yǎng)箱中200轉(zhuǎn)1h。 6。5000rpm/min中離心1min。 7。在無(wú)菌操作臺(tái)中取出上清液450μl,然后剩余的100μl全部涂板(Amp抗性),倒置到37℃培養(yǎng)箱中。 結(jié)果:不漲菌落。。 問(wèn)題: 是不是濃度太大的問(wèn)題,還是操作步驟有問(wèn)題,求各位指導(dǎo) [ Last edited by 1949stone on 2012-8-24 at 17:05 ] |


木蟲 (正式寫手)
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個(gè)人認(rèn)為你可以修改幾個(gè)條件 1.適當(dāng)增加點(diǎn)質(zhì)粒的量,但不要超過(guò)總體的十分之一就好; 2.DH5a感受態(tài)熱擊90s試試; 3.復(fù)蘇培養(yǎng)的時(shí)候培養(yǎng)基改成SOC會(huì)好很多; 4.這時(shí)候的菌很脆弱,最好把轉(zhuǎn)速降低點(diǎn),之前有過(guò)同學(xué)只是放在恒溫培養(yǎng)箱里靜置就可以的; 5.離心時(shí)間可以增長(zhǎng)點(diǎn),比如5min; 6.涂板的時(shí)候只要涂布均勻即可,不需要太長(zhǎng)時(shí)間; 7.涂布之后,最好正面朝上靜置幾分鐘,新平板就時(shí)間長(zhǎng)點(diǎn),舊平板就時(shí)間短點(diǎn)。 個(gè)人意見(jiàn),僅供參考! |
金蟲 (正式寫手)
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我覺(jué)得你轉(zhuǎn)化之后,培養(yǎng)的溫度,轉(zhuǎn)速和時(shí)間都可以修改一下,可以調(diào)成37℃,250rpm培養(yǎng)2.5h,培養(yǎng)之后只需要進(jìn)行短暫離心,不需要離心那么久, 你涂好的平板最好是平放半小時(shí)使菌液充分吸收后在倒置培養(yǎng), 42℃應(yīng)激的時(shí)間為90s。 也有可能你操作不當(dāng),轉(zhuǎn)化效率極低造成 |
木蟲 (正式寫手)
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1、加入質(zhì)粒的時(shí)候,感受態(tài)應(yīng)該是處于冰水混合的狀態(tài)時(shí)是最好的,不要等它全融化了再加; 2、質(zhì)粒1微升的加入量有點(diǎn)少,可以適當(dāng)多加點(diǎn),3-4微升; 3、42度熱激90s后,立即冰; 4、大腸桿菌搖床是在37度,轉(zhuǎn)速190rpm 1h就可以了; 5、注意或許也有感受態(tài)的問(wèn)題; 6、加入的AMP的濃度是否正確; 7、涂布的時(shí)候把液體涂干,不要有水;或者涂布完后打開(kāi)蓋子一點(diǎn),讓風(fēng)吹干,之后再37度倒置培養(yǎng)。 |
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