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echochen1017新蟲 (初入文壇)
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[求助]
PCR重復(fù)不出來
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| 之前在3月份PCR除了結(jié)果,并測序,現(xiàn)在重復(fù),已經(jīng)重復(fù)5天,沒有任何條帶,調(diào)高、調(diào)低模板濃度,并且在冰上加樣,也沒有目的條帶,低濃度樣品在500bp左右出現(xiàn)非特異性條帶,請教這是什么情況呢? |
銀蟲 (小有名氣)

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你的PCR出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增帶和可重復(fù)性低本質(zhì)就是你的PCR的專一性不夠。 PCR擴(kuò)增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計的大小不一致,或大或小,或者同時出現(xiàn)特異性擴(kuò)增帶 與非特異性擴(kuò)增帶。非特異性條帶的出現(xiàn),其原因:一是引物與靶序列不完全互補、 或引物聚合形成二聚體。二是Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低,及PCR循環(huán)次數(shù)過多有關(guān)。其次是酶的質(zhì)和量,往往一些來源的酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來源的酶 則不出現(xiàn),酶量過多有時也會出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增。 其對策有:首先可以調(diào)整鎂離子的濃度, 由5.0mmol/L起以0.05mmol/L為單位逐漸下降至1.0mmol/L,降低鎂離子的濃度無效的話,也可以提高鎂離子濃度,最高不超過10.0mmol/L.調(diào)整引物濃度(你的非特異性擴(kuò)增多,因此應(yīng)適當(dāng)降低引物濃度),適當(dāng)增加模板量,減少循環(huán)次數(shù)。減低酶量或調(diào)換另一來源的酶。適當(dāng)提高退火溫度。 使用熱啟動的PCR.可用石蠟隔離方式:先放引物、模板、緩沖溶液(以上稱為A液)入PCR管,然后加入固體石蠟,75度水浴PCR管5分鐘,目視石蠟完全融化后拿PCR管出水浴鍋室溫下豎直放置約15分鐘,待石蠟重新凝固為固體層后,在石蠟層上加入聚合酶、dNTP、MgCl2、緩沖溶液(以上稱為B液),也就是使固體石蠟層隔離A液與B液在PCR管的上下兩層。反應(yīng)開始后,石蠟再度熔化,反應(yīng)體系形成。每種調(diào)整均可以分梯度進(jìn)行。 一般商用的酶制劑里都還有甘油,酶的用量較大時最好是事先超濾或者透析去除一些甘油。 加入0.01%的BSA,白明膠或者Tritom X-100.也有助于提高PCR反應(yīng)的專一性和可重復(fù)性。以上都不行則要重新設(shè)計引物。 另外,時機(jī)最好用新鮮的,操作注意防止污染。 |
銀蟲 (小有名氣)

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