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yhdchina新蟲 (初入文壇)
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怎樣能得到高純度的蛋白? 已有4人參與
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| 我用Ni離子親和層析純化融合蛋白,6個His標(biāo)簽在載體端,然后柱上用腸激酶4°C過夜將載體與目的多肽切開,純化得到我的目的多肽(約4.2KDa),此多肽是存在于腸激酶緩沖液中的。在中科新生命用RP-HPLC測純度只有50%,不知道怎么回事,怎樣能得到純度>95%的蛋白呢? |
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蛋白質(zhì)的親和層析的基礎(chǔ)是蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用或者蛋白質(zhì)-其他分子相互作用,這樣的相互作用的專一性很高,但是不是100%,因?yàn)榈鞍踪|(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用的表面積也就是1000-2000平方埃最多,少一些600平方埃也有,每個氨基酸殘基的表面積大的200平方埃,小的80平方埃,也就是說蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用也就是彼此6-10個氨基酸的表面的分子識別而已,不可能是絕對專一。所以抗體-抗原反應(yīng)還存在交叉反應(yīng)哪。蛋白質(zhì)-其他分子相互作用可能比蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用,因?yàn)橹辽儆袡C(jī)和無機(jī)小分子的表面積一般達(dá)不到6個氨基酸殘基的表面積,所以可能分子識別的精確度會相對更低。所以不要完全寄希望于親和層析一步就能完成分離純化,之前之后都應(yīng)該使用別的蛋白質(zhì)分離純化方法。需要注意三個問題: 1.蛋白質(zhì)的親和層析應(yīng)該在蛋白質(zhì)的后期分離時使用,在親和層析之前樣品應(yīng)該用其他方法盡量純化,減少親和層析的分離純化負(fù)擔(dān)。蛋白質(zhì)分離純化的前期處理可用分級離心、沉淀、超濾和透析等粗分離方法;之后的細(xì)分離方法可用離子交換樹脂、分子篩層析、疏水層析等。要不輕易用電泳來分離純化,因?yàn)椴缓脧?fù)性,用電泳做檢測比較好,然后還可以疏水層析和親和層析,親和層析之后可以再用分子篩層析和疏水層析。 2.蛋白質(zhì)的親和層析應(yīng)該不只使用一次,不要完全寄希望于親和層析一步就能完成分離純化。你的親和層析因?yàn)橹苯佑昧四c激酶切斷了(組氨酸)6親和標(biāo)簽,所以無法再重復(fù)親和層析了。實(shí)際上,至少第一次用Ni-(組氨酸)6親和層析不要用腸激酶切斷(組氨酸)6親和標(biāo)簽,而用咪唑分濃度梯度把目的蛋白質(zhì)從Ni-柱洗下來,這樣可以對洗下來的樣品多洗幾次,最后再用腸激酶切斷(組氨酸)6親和標(biāo)簽進(jìn)行蛋白質(zhì)分離提純,這樣純度可以高得多。因?yàn)橛媚c激酶切斷(組氨酸)6親和標(biāo)簽進(jìn)行蛋白質(zhì)分離提純是不可逆的,至此也意味著親和層析的結(jié)束。你要是一上來就用酶切的方法,那么親和層析只用了一次,蛋白質(zhì)純度當(dāng)然高不了。 3.親和層析不是必然的蛋白質(zhì)的分離純化工作的終點(diǎn)。蛋白質(zhì)的親和層析之后也可以再用其他的層析方法和樣品濃縮及凍干方法;必要時甚至可用電泳(如果能夠保證樣品充分回收和活性恢復(fù)的話)。 |
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