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shiyiyaya金蟲 (正式寫手)
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[求助]
克隆失敗原因:NdeI+KpnI? 已有4人參與
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現(xiàn)有: 15K質(zhì)粒pA,NdeI+KpnI雙酶切之后產(chǎn)生11K+4K(回收11K做載體); 6.7K質(zhì)粒pB,NdeI+KpnI雙酶切之后產(chǎn)生4K+2.7K(回收4K做外源DNA); 連接回收的11K和4K。 結(jié)果失。航(jīng)多種方案鑒定,轉(zhuǎn)化長(zhǎng)出來(lái)的重組子都是質(zhì)粒pB. 我已經(jīng)嘗試單酶切*2次、PCR擴(kuò)增4K片段,重新轉(zhuǎn)化質(zhì)粒,挑單克隆再繼續(xù)…都不行。感覺就像pB沒有切干凈。 請(qǐng)問(wèn)蟲友,可否遇到類似情況?NdeI+KpnI,這兩個(gè)酶的活性就是低嗎? 謝謝幫忙! |
金蟲 (正式寫手)
琴美喜歡發(fā)呆 不喜歡發(fā)脾氣
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............. 首先,酶自身不會(huì)有問(wèn)題,其次,我不明白的是這個(gè)問(wèn)題,你PCR 4K片段,再做連接,會(huì)不會(huì)長(zhǎng)出來(lái)的也是pB質(zhì)粒?如果是,污染是可能性很大,我估計(jì)那個(gè)7k左右的質(zhì)粒其實(shí)并不是pB。我以前遇到這種情況,雙酶切載體(載體上帶片段,所以雙酶切可以分辨清楚),用了一個(gè)不加片段而加ddH2O的對(duì)照,發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)出來(lái)的很多克隆,這些克隆用一個(gè)酶酶切是原來(lái)載體的樣子,用另一個(gè)酶酶切就不對(duì)了。所以我懷疑污染的可能性要大于載體自連的可能性。 所以針對(duì)你的情況,我的建議是這樣,把4K的片段克隆到T載體上,然后用T載體上酶切下來(lái)的片段和11K做連接。繞過(guò)對(duì)pB質(zhì)粒進(jìn)行的直接操作。另一個(gè),做構(gòu)建盡量選用硅膠柱做質(zhì)粒提取是比較合適的。 |

木蟲 (著名寫手)
| 酶切的話,不存在那種酶的酶活性問(wèn)題,有的只是不同廠家的酶質(zhì)量問(wèn)題,另外存放等影響因素。當(dāng)然操作時(shí)添加適當(dāng)?shù)牧恳彩窍喈?dāng)重要的。我覺得你說(shuō)說(shuō)你的酶切和連接具體操作會(huì)有助于大家對(duì)你進(jìn)行分析。 |

鐵桿木蟲 (正式寫手)

金蟲 (正式寫手)
金蟲 (正式寫手)
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堿裂解法小提質(zhì)粒,外源DNA切于2ug質(zhì)粒,載體片段切于800ng質(zhì)粒,酶切總體系30ul, 10U KpnI,F(xiàn)ermentas, FD Buffer; 10U NdeI, Thermo scientific, o buffer. 酶切2h,條帶清晰、干凈。凝膠回收柱回收(生工的)。 載體片段溶于30ul TE,外源片段溶于15ul ddH2O. 連接使用NEB T4DLig,10ul體系,載體取1ul,外源全部用上,buffer、水補(bǔ)齊。 16度過(guò)夜、轉(zhuǎn)化、鑒定。 一般來(lái)說(shuō),12個(gè)轉(zhuǎn)化子,10個(gè)一樣,都是外源的原始質(zhì)粒,7K左右大小。其余的也不正確。 求解啊! |
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既然你都切開了,那就是連接酶的問(wèn)題。不知道你這個(gè)質(zhì)粒的抗性如何。 此外,沒圖沒真相啊。建議你跑一個(gè)pB沒有酶切的,pB單酶切,pB雙酶切的對(duì)比一下 既然出現(xiàn)兩條帶,不太可能是沒切干凈,感覺。 還有內(nèi)切酶不行的話換個(gè)牌子的內(nèi)切酶試一下。但是個(gè)人覺得你用的那個(gè)牌子的內(nèi)切酶還是很強(qiáng)悍的。我構(gòu)建過(guò)3個(gè)載體,都是用Fe***的。 有一點(diǎn)我很好奇,為啥你內(nèi)切酶用Fe****的,連接酶用N**的。 質(zhì)粒有沒有切干凈我個(gè)人感覺看電泳圖就能說(shuō)明問(wèn)題。我質(zhì)粒單酶切都是單一條帶,沒有切過(guò)的質(zhì)粒都是2-3條帶。 另外你說(shuō)都是重組子pB,這個(gè)結(jié)論你是怎么得出來(lái)的??測(cè)序驗(yàn)證?PCR檢驗(yàn)? 質(zhì)粒、RNA跑電泳的話marker純粹僅僅作為參照,并不能絕對(duì)反映出質(zhì);蚴荝NA的真實(shí)大小! |
金蟲 (正式寫手)
金蟲 (正式寫手)
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