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id90銅蟲 (初入文壇)
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[求助]
求助TCA沉淀濃度蛋白的問題 已有2人參與
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我做的是畢赤酵母表達(dá)外源蛋白,由于蛋白的表達(dá)量較少,需要濃縮后,電泳分析。 我用的TCA方法是: 1mL 樣品中加入180μL ~ 200μL 預(yù)冷的TCA,充分震蕩,于4℃保存過夜。第二天離心去掉上清,加入200μL預(yù)冷的丙酮,洗滌兩次。沉淀用緩沖液重溶,電泳。 我的問題是:樣品是通過離子交換柱濃縮得到的、具有活性,但是加入TCA后沒有沉淀出現(xiàn),所以離心去上清的時候我保留幾μL的液體,再加入丙酮,就會有白色沉淀出現(xiàn)。之后進(jìn)行電泳,能看到目的蛋白。是不是TCA不能沉淀出蛋白,而丙酮將蛋白沉淀出來,也有人說丙酮沉淀出的是鹽。求助我的方法是不是有問題,需要怎么改進(jìn)? |
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首先了解一下TCA沉淀的原理,TCA是酸,可以使蛋白變性,從而沉淀下來,另外TCA可以與蛋白形成不溶性的鹽?傊甌CA沉淀一般是不可逆的,也就是TCA是用來除雜蛋白的,而且效果是很明顯的,你的樣品加入TCA后沒有沉淀是你的TCA濃度不夠,你加大TCA濃度肯定有沉淀,可以做一個TCA梯度試試。 但是,個人建議,像我上述所說,TCA沉淀一般不可逆,所以建議你TAC沉淀過程盡量使你的目的蛋白保留在上清液中,然后用丙酮再純化一次。 丙酮屬于有機(jī)溶劑沉淀蛋白,是剝離蛋白的水化膜,從而使蛋白分子碰撞沉淀,稀釋后可以復(fù)性。你所說的丙酮沉淀生成鹽是錯誤的,酸還有重金屬沉淀蛋白才會生成鹽。 |
銅蟲 (初入文壇)
銅蟲 (初入文壇)
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具體多少濃度都是做預(yù)實(shí)驗或者查文獻(xiàn)的,不同的蛋白有不同的濃度,我以前做純化時,用過50%也用過75%。這就考察本科時的實(shí)驗功底了。還有離子交換濃縮我只聽說過,具體的沒見過,根據(jù)我多年的純化經(jīng)驗,離子交換濃縮很難實(shí)現(xiàn),過柱后不稀釋已經(jīng)很難得了,別說濃縮了。你可以問問GE分離純化的技術(shù)部,他們肯定也不建議使用離子交換濃縮。至于TCA和丙酮他們其實(shí)是起到一個生物富集作用,純化還是要過柱子的。純化后再濃縮就不能在引入其他成分了(置換緩沖液除外),這是要考慮用PEG或者超濾管濃縮,有錢的就用分子篩干膠,轉(zhuǎn)固體用凍干,真空干燥也可以考慮。噴霧干燥不適合。 |
銅蟲 (初入文壇)
鐵蟲 (小有名氣)
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