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[交流]
【求助/交流】RT-PCR ,內(nèi)參在哪個(gè)步驟添加以及marker何時(shí)使用及確定?謝謝
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大家好, 準(zhǔn)備做RT-PCR,看了一些資料,但是有些問題還不明; 1. 內(nèi)參一定要用,但是要何時(shí)添加,在哪個(gè)步驟添加。 看到論壇上有說單獨(dú)p,也有說和目的基因一起p,不是很清楚。 得到c DNA后PCR,這個(gè)體系要加入上游引物和下游引物,是不是內(nèi)參就作為對(duì)照,直接P? 內(nèi)參本身是為了消除差異性,如果單獨(dú)p,是如何消除的呢?如果一起P,結(jié)果出現(xiàn)的條帶又是怎樣的呢? 2. marker 何時(shí)用,如何選擇? 提取出RNA后,要電泳鑒定其質(zhì)量,此時(shí)要用marker嘛? 最終的pcr產(chǎn)物,電泳也要用到marker是嘛?那內(nèi)參怎么用的? marker是否單獨(dú)一個(gè)孔跑還是要和目的產(chǎn)物混合來跑? marker是根據(jù)引物的產(chǎn)物長(zhǎng)度來確定的還是目的基因的大小確定? 3. 別人文獻(xiàn)上有已知引物序列,想要使用它的序列,但是反應(yīng)條件沒有給出,自己要怎么確定條件呢? 就是在找公司做引物的時(shí)候,需要注意些什么呢?他合成出的引物會(huì)有什么信息不? 初學(xué),也沒有師兄師姐帶,要直接學(xué)習(xí),問的問題可能很幼稚,但希望高手能夠指點(diǎn)。 下面來說下我看到的PCR的過程: 先提取出RNA (注意不要降解),然后分裝,一部分用于電泳等檢測(cè)RNA質(zhì)量,其他4攝氏度保存,保存時(shí)間較短。 RT:按試劑盒操作。 得到的c DNA 4℃保存,保存較久。 PCR:設(shè)置反應(yīng)參數(shù)等。 這個(gè)過程有用到上游引物和下游引物,是不是內(nèi)參如參照一樣,單獨(dú)p? 最后就是pcr產(chǎn)物的電泳測(cè)定,用到上樣緩沖體系,怎樣確定用?*的上樣緩沖體系呢? 希望大家給小的一些指點(diǎn) 大恩大德 感激不盡 |
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下面來說下我看到的PCR的過程: 先提取出RNA (注意不要降解),然后分裝,一部分用于電泳等檢測(cè)RNA質(zhì)量,其他4攝氏度保存,保存時(shí)間較短。 RT:按試劑盒操作。 得到的c DNA 4℃保存,保存較久。 PCR:設(shè)置反應(yīng)參數(shù)等。 這個(gè)過程有用到上游引物和下游引物,是不是內(nèi)參如參照一樣,單獨(dú)p? 最后就是pcr產(chǎn)物的電泳測(cè)定,用到上樣緩沖體系,怎樣確定用?*的上樣緩沖體系呢? 答:有和前面重復(fù)的問題就不回答了; 提取出來的TotalRNA樣本要保存在-80里面,或者保存在液氮里面,否則很難保存。 cDNA原則上要保存在-20里面,如果短時(shí)間內(nèi)使用完則可保存在4度里。 電泳緩沖液你自己的書上找吧,任何一本基礎(chǔ)的專業(yè)書里都有,TAE我用的比較多,也有用TBE的。各有各的優(yōu)缺點(diǎn)。 最后給你推薦一本書,分子克隆實(shí)驗(yàn)指南,每天放在床頭看吧,上面會(huì)回答你的一切問題,起碼現(xiàn)階段的一切問題都能解決了。 這問題回答的,累死我了。 |
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你理解錯(cuò)了 他不是要做real-time定量PCR 而是要做普通的RT-PCR,RT-PCR是要用到內(nèi)參的。 內(nèi)參和目的基因分為兩管PCR。 PCR的程序反應(yīng)循環(huán)數(shù)要小一點(diǎn),因?yàn)閮?nèi)參是比較模板數(shù)的差異(也就是說你P目的基因時(shí),對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組如果加入的模板數(shù)不一致時(shí),所以要用內(nèi)參來消除加入模板量的差異),而PCR的循環(huán)數(shù)如果達(dá)到一定量的話產(chǎn)物的總量就會(huì)進(jìn)入一個(gè)平臺(tái)期,也就是說,如果你加入的模板數(shù)量不一致時(shí),而循環(huán)數(shù)過大的話,P出來的內(nèi)參的產(chǎn)物是一樣多的,凝膠電泳時(shí)的條帶幾乎是差不多亮的,那這樣的話就無法消除模板的差異了。而且P目的基因時(shí),也要盡可能的少循環(huán)少加模板,否則進(jìn)入平臺(tái)期則無法看出差異。 |
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內(nèi)參基因最好和目的基因一起擴(kuò),但并不是說放在一個(gè)管里面擴(kuò),而是分開。內(nèi)參基因一定要有。如果分開擴(kuò)的話,就要在兩次不同的PCR里加量化因子,消除由不同pcr反應(yīng)引起的誤差!定的引物會(huì)有信息的,特別是退火溫度,但是自己最好跑一次常規(guī)的pcr來確定。另外看了你下面的rna的問題,RNA提出出來后應(yīng)該立刻保存在-80度,而不是4度,以及cDNA也應(yīng)該是在-20度! 祝好運(yùn) |
| 量化因子,你就用你的一個(gè)cdna樣品就可以的,但是必須要包含你所有的基因(內(nèi)參和目的基因),相當(dāng)于對(duì)照,每個(gè)pcr盤里面都需要,從而計(jì)算出盤與盤之間的誤差并消除他。你看看這篇文章吧,說的很清楚的:qBase relative quantification framework and software for management and automated analysis of real-time quantitative PCR data. Genome biology,2007! |
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1. 內(nèi)參一定要用,但是要何時(shí)添加,在哪個(gè)步驟添加。 看到論壇上有說單獨(dú)p,也有說和目的基因一起p,不是很清楚。 得到c DNA后PCR,這個(gè)體系要加入上游引物和下游引物,是不是內(nèi)參就作為對(duì)照,直接P? 內(nèi)參本身是為了消除差異性,如果單獨(dú)p,是如何消除的呢?如果一起P,結(jié)果出現(xiàn)的條帶又是怎樣的呢? 答:我不知道我理解的對(duì)不對(duì),你既然用到了內(nèi)參就是要做定量PCR了,每個(gè)孔做一個(gè)樣本,每個(gè)樣本原則上要做三個(gè)重復(fù),內(nèi)參也當(dāng)做一個(gè)樣本來做,同樣三個(gè)重復(fù)?组g的差異是沒辦法避免的,除非做多重PCR,這對(duì)引物設(shè)計(jì)的要求就比較高了。如果每個(gè)孔做一對(duì)引物原則上是只有一條條帶的,如果有多個(gè)條帶肯定就是有問題了,要么是引物二聚體要么是非特異擴(kuò)增。 |
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2. marker 何時(shí)用,如何選擇? 提取出RNA后,要電泳鑒定其質(zhì)量,此時(shí)要用marker嘛? 最終的pcr產(chǎn)物,電泳也要用到marker是嘛?那內(nèi)參怎么用的? marker是否單獨(dú)一個(gè)孔跑還是要和目的產(chǎn)物混合來跑? 答:原則上講RNA檢測(cè)質(zhì)量需要用變性膠來跑才行,但大家都懶,就普通的瓊脂糖膠跑一下看看就好了,至于怎么用普通膠跑RNA檢測(cè)竅門說過很多次了,不說了。后面你又說PCR產(chǎn)物跑電泳的問題,既然用了內(nèi)參是做定量PCR為啥還跑電泳檢測(cè)啊,那這里我當(dāng)你是跑普通PCR來回答問題吧,每一個(gè)PCR管跑完了之后當(dāng)一個(gè)樣本,點(diǎn)在一個(gè)孔麗,通常講一張膠如果不是特別的多樣本的話就點(diǎn)一個(gè)Marker就好,用Marker已知大小的條帶來粗略判斷你的目標(biāo)片段對(duì)不對(duì)。Marker的大小需要根據(jù)你目標(biāo)序列的大小來購(gòu)買不同的產(chǎn)品的,因?yàn)楦鱾(gè)廠家賣的Marker大小不一樣,每種Marker還有很多個(gè)條帶 |
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3. 別人文獻(xiàn)上有已知引物序列,想要使用它的序列,但是反應(yīng)條件沒有給出,自己要怎么確定條件呢? 就是在找公司做引物的時(shí)候,需要注意些什么呢?他合成出的引物會(huì)有什么信息不? 答:別人文獻(xiàn)上的引物可以用,如果沒有反應(yīng)條件回來自己摸一下退火溫度或者直接做個(gè)梯度PCR就好了,延伸時(shí)間根據(jù)酶的特性和引物長(zhǎng)度來確定,大略的體系買酶的說明書上有。合成引物你直接給序列告訴合成量就行了,合成出的引物會(huì)給出該引物的序列,OD,長(zhǎng)度,TM等一些信息,但我一般不用,就用引物計(jì)算器算一下就可以了。 |
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