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[交流]
【求助】蛋白提取
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| 請(qǐng)問下酸會(huì)影響提細(xì)菌蛋白嗎?因?yàn)槲倚枰獙⑴囵B(yǎng)基中的難溶磷用酸溶掉才能得到菌體。謝謝。另外,提出的蛋白可以直接雙向電泳嗎? |
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捐助貴賓 (知名作家)
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后面看到,你的蛋白是用來做雙向電泳的,而不是測(cè)活的。 因此,低pH的酸應(yīng)該影響不到蛋白吧。 關(guān)鍵是你加酸量有多少? 難道要加100 mM的HCl處理 一小時(shí)? 那菌體估計(jì)都要破掉了。 你的菌體的獲得很麻煩嗎?難道是生長(zhǎng)在磷酸鈣之類的上面? 菌體提取的蛋白,要分成幾類: 1)最簡(jiǎn)單的,可溶性上清中的蛋白: 去除鹽類后,可以做雙向電泳的樣品。 2)膜蛋白,因?yàn)榭扇苄圆,需要特殊的試劑處理,增加其在第一維電泳時(shí)的可溶性。具體的你得去查論文,這里只是提示一下。 另外,實(shí)際上,對(duì)于全細(xì)胞蛋白,雙向電泳許多時(shí)候會(huì)過濾掉很多蛋白點(diǎn)的! 選擇雙向電泳Loading buffer 組分很關(guān)鍵。 |
捐助貴賓 (知名作家)
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絕對(duì)不可以。 濃鹽酸會(huì)溶解細(xì)胞,1min 內(nèi)就溶解了,然后大部分蛋白被酸沉。 酸,即使50 mM HCl,也會(huì)沉淀許多細(xì)胞蛋白。 我覺得你沒必要非要這時(shí)候去除磷酸鈣。 你可以在破碎菌體時(shí)離心去除的。 你如果是做菌體上清蛋白,而發(fā)酵液沒有其他固體培養(yǎng)基的話, 建議你在pH8-10之間,直接超聲破碎 發(fā)酵液沉淀(就是磷酸鈣+菌體), 然后在4℃ 10000 rpm 離心10-20min, 這樣,磷酸鈣都沉淀了, 取上清即可。 如果想溶解更多的膜蛋白(或全菌體蛋白),需要用2D電泳的Loading Buffer 加入發(fā)酵液沉淀,來直接超聲破碎沉淀,然后在4℃ 10000 rpm 離心10-20min,取上清。 如果想鑒定破碎液的蛋白, 就用SDS -PAGE電泳 loading buffer, 加入樣品后沸水浴3-5min,離心,上樣即可。 你看如何? [ Last edited by HarveyWang on 2011-4-13 at 18:40 ] |
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