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請教real time pcr問題,謝謝!
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各位大蝦們,小弟想咨詢一些熒光定量的問題,如下: 1. RNA提取后,必須要測濃度嗎,要根據(jù)濃度來決定加入多少ul的rna嗎? 2. 假如cDNA中還有DNA污染,該怎么辦?能在cDNA中加入DNAseI除去DNA嗎,這回切割cDNA嗎? 3. 我的模板稀釋了四個梯度(5,25,125,625)選用18s做內(nèi)參,結(jié)果CT值很大,都在30以上,后來調(diào)整了預變性時間,從5min增加到10min,CT值降為24左右,但是這對于內(nèi)參基因來講,仍然很大。我的目的基因CT值都在32-33以上。請問這是怎么回事?我的RNA用盒子提的,效果不錯。反轉(zhuǎn)錄用的promega的m-mlv,用ologodt15(50uM)做引物。 4. 我有個同學做逆境,相同稀釋倍數(shù)時,干旱處理時內(nèi)參18S的CT在10左右,但做鹽脅迫時相同18S的CT值竟然都在25左右,后來測了一下模板濃度, 都在1000-1300ng左右,感覺差不多呀,聽一個師姐說做不同的逆境,可能需要不同的引物,請問這是怎么回事呢? 小弟最近一直很迷茫,不敢輕易再上ABI7500去嘗試了,因為材料有限,模板有限,不敢輕易得瑟模板。請各位大蝦給予解答!謝謝! |
【分子生物】EPI帖 |

榮譽版主 (知名作家)
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1.需要測濃度的,理由:(1)不同的樣品,用的RNA量一樣(cDNA量也一樣),定量結(jié)果更可靠。雖然內(nèi)參可以校正樣品量的差異,但是起始RNA量一樣的話,結(jié)果更可靠,也更漂亮(理想情況是各個不同樣品內(nèi)參的Ct值非常接近);(2)反轉(zhuǎn)錄酶能力不是無限的,說明書上都有說RNA的最大加入量,所以需要預先知道RNA濃度;(3)保證實驗的可重復性。 2.DNA酶也會降解cDNA。不過可以用DNA酶處理RNA,之后滅活DNA酶(一般就是酚氯仿抽提),再做反轉(zhuǎn)錄。但是這樣RNA的量損失很大,你樣品少的話不推薦這樣。當然通過引物設(shè)計,跨內(nèi)含子,可以避免基因組DNA的擴增,不過引物有時候很難設(shè)計。最好的辦法,還是好好提你的RNA,特別是加氯仿抽提之后取上清時,不要貪多,這樣就能避免基因組DNA的污染了。再說了,你用試劑盒提的,如果還有基因組DNA污染,那就是操作不當啦。你樣品寶貴,可以用其他材料,專門練練RNA提取。 (老婆逼睡覺,未完待續(xù)) |
榮譽版主 (知名作家)
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3. Ct值跟預變性時間關(guān)系不大。你的情況是模板濃度太低了。連稀釋5倍Ct值都那么大,那起始的RNA量太少了。下次測了RNA濃度,然后按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒允許使用的RNA最大量來做反轉(zhuǎn)錄。之后梯度稀釋(一般10倍一個梯度)再做熒光定量PCR。這個算是預實驗,要解決的問題是模板該用多少ul。 4.如果內(nèi)參隨處理不同而變化的話,那不是個好內(nèi)參啊。好的內(nèi)參基因,不管如何處理,只要模板量一樣,它的Ct值就應(yīng)該差不多。不知道你師姐說的用不同引物是不是指用不同的內(nèi)參基因,這方面還是問問你師姐吧?梢宰鰞(nèi)參的基因很多,actin、GAPDH、tublin等等,如果18s確實有這樣的變化,建議你還是查查文獻,換其他內(nèi)參。 一家之言,僅供參考,歡迎各位同行指正哈 |
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1.最還把RNA稀釋到一個濃度,然后做反轉(zhuǎn)錄,盡力把所有的條件都統(tǒng)一到一個水平,這樣做出來的結(jié)果會更可靠 2.做定量的時候確實要考慮基因組DNA污染的問題,如果你不想取出gDNA的話,那就在設(shè)計引物上下功夫,引物跨內(nèi)含子的話,就可以排除gDNA的影響;蛘,可以再反轉(zhuǎn)錄前取出基因組DNA,Takara公司有這種反轉(zhuǎn)錄試劑盒,在RT之前加一步gDNA去除的步驟,效果還可以,我就是用的這個試劑盒,挺好的。 |
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