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有關糖代謝酶,誰做過,請幫我想想解決的辦法,急,謝謝 已有1人參與
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SPS活性測定參照Komatsu等、Lowell等、Hubbard等和陳俊偉的方法,并加以改進。在80μl 反應體系中含 50mmol/L Hepes一NaoH緩沖液 (pH7.5),15mmol/LMgcl2,1mmol/L一1EDTA,5mmol/L NaF,10mmol/L UDPG,4mmol/L F一6一P,20mmol/L G一6一P,酶提取液;300C反應 30min,然后加入60μl 5mol/LNaOH終止反應,最后沸水浴 10min,冷卻后加入1ml 0.14%的蒽酮(溶解在13.8mol/L 的H2SO4中,即0.14g蒽酮溶解在76ml H2SO4 +30ml水中)400C反應20min,測定A620。對照反應體系中不含Fru 6-P和Glc 6-P。。酶活力以單位鮮果重中的酶在單位時間內催化底物生成蔗糖的μmol數表示。單位為:μmol.h-1.g-1FW(FW指果實鮮重)。 SS合成方向的活性測定參照Lowell等、Hubbard等和陳俊偉的方法,并加以改進。在60μl反應體系中含 80mmol/LHpes一NaoH緩沖液 (pH7.5),5mmol/L KCN, 5mmol/L NaF,100mmol/L 果糖,10mmol/L UDPG,酶提取液;300C應 30min,加入60 μl 5mmol/LNaoH終止反應,沸水浴 10min,冷卻后加入1ml 0.14%的蒽酮(溶解在13.8mol/L 的H2SO4,中,即0.14g蒽酮溶解在76ml H2SO4 +30ml水中)400C反應20min,測定A620。對照反應體系中不含果糖。酶活力以單位鮮果重中的酶液在單位時間內催化底物生成蔗糖的μmol數表示。單位為:μmol.h-1.g-1.FW(FW指果實鮮重)。 SS分解方向的活性測定參考Lowell等和陳俊偉的方法。在490μl反應體系中含80 mmol/L Mes緩沖液(pH 5.5),(5mmol/L NaF,100mmol/L蔗糖, 5mmol/LUDP),酶提取液;300C反應 30min,加入490μlDNS(稱6.3g 3,5一二硝基水揚酸溶解于水中,加2.1g NaOH和185g酒石酸鉀鈉后,加水(煮沸十分鐘后冷卻密封)500mL,加熱溶解后,加重蒸酚5g,無水亞硫酸鈉 5g,加熱攪拌,冷卻后定容至1000mL,貯存于棕色瓶中,放置一周之后使用)試劑終止反應,沸水浴 5min,冷卻后測定A540。對照反應體系中不含UDP. 酶活力以單位鮮果重中的酶液在單位時間內催化底物生成蔗糖的μmol數表示。單位為:μmol.h-1.g-1.FW(FW指果實鮮重)。 酸性轉化酶(AI)和中性轉化酶(NI)的測定按照Merlo和Passera(1991)的方法,略有改動。反應液總體積為l ml,包括:o.1 mol /L乙酸鈉-乙酸(pH 4.8,對酸性轉化酶)或O.1 mol /L磷酸氫二鉀,0.1 mol /L檸檬酸鈉-檸檬酸(pH 7.2,對中性轉化酶),0.1 mol /L蔗糖和O.1 ml酶液。在370C保溫40 min后,加1 ml 3,5-二硝基水楊酸試劑終止反應,準確煮沸5 min,冷卻,測定A520,即測定從蔗糖釋放還原糖的量。用酶空白作對照,底物空白用參比。酶空白只含有酶液和反應液,不含底物:底物空白只含有底物和反應液,不含酶液,其它步驟相同。 這是我的方法,但是我做出來不對。 1; 我用上面的蒽酮比色法做蔗糖的標曲,加入我配好的0.14%的蒽酮(溶解在13.8mol/L 的H2SO4,中,即0.14g蒽酮溶解在76ml H2SO4 +30ml水中)之后,蔗糖溶液全部產生乳白色的絮狀物,不知道到底是什么原因 2, 我用dns法做葡萄糖標曲時,葡萄糖濃度為500微克每毫升開始煮沸后后冷卻就產生絮狀物,加熱又會溶解,完全在書上坐標曲的濃度范圍之內,不知道這是咋咋回事 3, 我測酶活性時空白里不加每,只加底物和反應液,應該沒問題吧,但是測出來的數據還是有問題,請指點 非常感謝 |
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