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Marado金蟲 (正式寫手)
Dreamer
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[求助]
求助!關(guān)于GST融合蛋白純化!樓主愁得一夜沒有睡好!
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目前的情況是這樣的: 1.構(gòu)建的表達(dá)載體測(cè)序正確 2.37℃誘導(dǎo)有目的條帶,表達(dá)量不錯(cuò). 3.上清無目的蛋白,無酶活,這個(gè)與文獻(xiàn)相符. 4.細(xì)胞破碎后,上清有目的蛋白,但是遠(yuǎn)不如沉淀物中目的蛋白含量高,另外感覺破碎怎么都不澄清,可能包涵體含量較高? 5.破碎后的細(xì)胞上清測(cè)量有酶活,且酶活力還不錯(cuò). 6.目前用菌液量為1L,37℃誘導(dǎo)6h的細(xì)胞去破碎,之后測(cè)量酶活,發(fā)現(xiàn)只有上次破碎250ml細(xì)胞,單位酶活的1/3,可能是沒有破碎完全?后取上清進(jìn)行純化,純化后悲劇了……發(fā)現(xiàn)純化后無酶活,目前正在進(jìn)行SDS-PAGE,看流川液,洗滌液,洗脫液中是否有目的蛋白, 樓主這個(gè)表達(dá)做了幾個(gè)月了,好容易到了最后一步純化了,昨晚12點(diǎn)測(cè)完酶活,心都是涼的……一宿沒睡好.想請(qǐng)大家?guī)兔Ψ治鲆幌拢赡苣睦锍鰡栴}了. |
【分子生物】EPI帖 |

金蟲 (正式寫手)
Dreamer

木蟲 (小有名氣)
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不知道你電泳的結(jié)果怎么樣了 先是看有沒有純化到目的蛋白,再就是看看純化體系是否影響酶活 大量誘導(dǎo)的單位表達(dá)量與預(yù)表達(dá)相比下降是正常的 可以優(yōu)化條件或者擴(kuò)大體積 總之 沒必要太傷心 有表達(dá)有活性都是好事 說明已經(jīng)成功了大半了 另外,洗脫體積大不大?純化后是否進(jìn)行了濃縮? |
金蟲 (正式寫手)
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GST標(biāo)簽的蛋白一般掛柱效果都比較差。而且你是在37度誘導(dǎo)的,細(xì)菌生長最為迅速,產(chǎn)生蛋白也很快,所以蛋白的折疊會(huì)比較匆忙,很有可能你的蛋白沒有正確折疊,把GST標(biāo)簽裹在里面了,所以才會(huì)不掛柱的。 所以介意你采取低溫過夜誘導(dǎo),盡量讓蛋白正確緩慢的折疊,這樣會(huì)對(duì)你的掛柱有所改善。 還有次級(jí)選擇就是用尿素變性,這樣GST標(biāo)簽就露在外面,就肯定能夠掛柱了,不過變性復(fù)性的就會(huì)很麻煩,損失較大,活性也不見得會(huì)好。 |
金蟲 (正式寫手)
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首先我覺得你的表達(dá)沒有大的問題。如果覺得包涵體過多,可以考慮降低溫度,30°或者16°,同時(shí)降低IPTG的濃度,。在高水平表達(dá)時(shí),新生肽鏈的聚集速率一旦超過蛋白折疊的速率就會(huì)導(dǎo)致包涵體的形成。因此,降低重組蛋白合成的速率有利于提高重組蛋白的可溶性表達(dá)。 再有你的蛋白的酶活性,兩次的破碎后未純化的結(jié)果不同,這一步可能是超聲的原因,因?yàn)閮纱蔚牧坎煌,不知道你是怎么處理的?有些人認(rèn)為超聲功率過大會(huì)導(dǎo)致部分肽鍵斷裂,不過沒有被證實(shí);總之,超聲的條件是很重要的。 最后純化的話:選擇低鹽濃度洗脫,一般蛋白純化后都要除鹽,在這你的蛋白雖然表達(dá)出來了,但是不代表就一定正確的折疊,這樣就和包涵體一樣,沒有活性,你就得考慮變性再復(fù)性了,但是一般的結(jié)果不會(huì)太好。 你不是有文獻(xiàn)嗎?測(cè)酶活的時(shí)候照著文獻(xiàn)來就是了。 最后,大腸表達(dá)系統(tǒng)的缺點(diǎn)就是可能表達(dá)的外源蛋白是沒有活性的,因?yàn)榇竽c桿菌不會(huì)對(duì)目標(biāo)蛋白進(jìn)行正確修飾。而芽孢桿菌表達(dá)系統(tǒng)就克服了這個(gè)缺點(diǎn),但是芽孢桿菌不好轉(zhuǎn)化。 希望對(duì)你有用。 |

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