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Marado金蟲 (正式寫手)
Dreamer
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[求助]
求助!關(guān)于GST融合蛋白純化!樓主愁得一夜沒有睡好!
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目前的情況是這樣的: 1.構(gòu)建的表達載體測序正確 2.37℃誘導(dǎo)有目的條帶,表達量不錯. 3.上清無目的蛋白,無酶活,這個與文獻相符. 4.細胞破碎后,上清有目的蛋白,但是遠不如沉淀物中目的蛋白含量高,另外感覺破碎怎么都不澄清,可能包涵體含量較高? 5.破碎后的細胞上清測量有酶活,且酶活力還不錯. 6.目前用菌液量為1L,37℃誘導(dǎo)6h的細胞去破碎,之后測量酶活,發(fā)現(xiàn)只有上次破碎250ml細胞,單位酶活的1/3,可能是沒有破碎完全?后取上清進行純化,純化后悲劇了……發(fā)現(xiàn)純化后無酶活,目前正在進行SDS-PAGE,看流川液,洗滌液,洗脫液中是否有目的蛋白, 樓主這個表達做了幾個月了,好容易到了最后一步純化了,昨晚12點測完酶活,心都是涼的……一宿沒睡好.想請大家?guī)兔Ψ治鲆幌,可能哪里出問題了. |
【分子生物】EPI帖 |

金蟲 (正式寫手)
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首先我覺得你的表達沒有大的問題。如果覺得包涵體過多,可以考慮降低溫度,30°或者16°,同時降低IPTG的濃度,。在高水平表達時,新生肽鏈的聚集速率一旦超過蛋白折疊的速率就會導(dǎo)致包涵體的形成。因此,降低重組蛋白合成的速率有利于提高重組蛋白的可溶性表達。 再有你的蛋白的酶活性,兩次的破碎后未純化的結(jié)果不同,這一步可能是超聲的原因,因為兩次的量不同,不知道你是怎么處理的?有些人認為超聲功率過大會導(dǎo)致部分肽鍵斷裂,不過沒有被證實;總之,超聲的條件是很重要的。 最后純化的話:選擇低鹽濃度洗脫,一般蛋白純化后都要除鹽,在這你的蛋白雖然表達出來了,但是不代表就一定正確的折疊,這樣就和包涵體一樣,沒有活性,你就得考慮變性再復(fù)性了,但是一般的結(jié)果不會太好。 你不是有文獻嗎?測酶活的時候照著文獻來就是了。 最后,大腸表達系統(tǒng)的缺點就是可能表達的外源蛋白是沒有活性的,因為大腸桿菌不會對目標蛋白進行正確修飾。而芽孢桿菌表達系統(tǒng)就克服了這個缺點,但是芽孢桿菌不好轉(zhuǎn)化。 希望對你有用。 |

木蟲 (小有名氣)
金蟲 (正式寫手)
Dreamer

金蟲 (正式寫手)
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GST標簽的蛋白一般掛柱效果都比較差。而且你是在37度誘導(dǎo)的,細菌生長最為迅速,產(chǎn)生蛋白也很快,所以蛋白的折疊會比較匆忙,很有可能你的蛋白沒有正確折疊,把GST標簽裹在里面了,所以才會不掛柱的。 所以介意你采取低溫過夜誘導(dǎo),盡量讓蛋白正確緩慢的折疊,這樣會對你的掛柱有所改善。 還有次級選擇就是用尿素變性,這樣GST標簽就露在外面,就肯定能夠掛柱了,不過變性復(fù)性的就會很麻煩,損失較大,活性也不見得會好。 |
金蟲 (正式寫手)
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木蟲 (著名寫手)
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