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sherrysure銀蟲 (小有名氣)
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我的蛋白序列鑒定都是正確的,可是為什么就是不表達(dá),是為什么呢?附SDS-PAGE圖
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核酸生物學(xué)實驗經(jīng)驗 | 蛋白質(zhì)生物學(xué)實驗經(jīng)驗 |
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2010年時,我從網(wǎng)上摘錄的一份材料,樓主可以參考. "原核表達(dá)個人秘笈:表達(dá)前的分析比什么都重要 http://www.freeduan.com/viewthre ... ;amp;extra=page%3D1 表達(dá)不同于其它一些實驗,比如:提取質(zhì)粒、PCR、電鏡切片,這些人為控制的因素比較多,出問題相對來說也比較好分析。表達(dá)呢,你把質(zhì)?寺『美玻唤o細(xì)胞,然后有些事情就不全是你要怎樣就怎樣了。原核表達(dá)在表達(dá)當(dāng)中來說還是比較簡單,細(xì)菌培養(yǎng)條件簡單、生長速度快,需要的儀器和培養(yǎng)基都比較便宜。當(dāng)然,它也存在一些缺乏高級修飾、細(xì)胞內(nèi)部還原性過高等缺點。 原核表達(dá)從一開始的設(shè)計就非常重要,所謂好的開始是成功的一半。做足準(zhǔn)備功夫,可是省去很多將來后悔的事情。首先,我們要根據(jù)是否要求可溶將載體分成兩大類,如果希望可以同時嘗試多種表達(dá)系統(tǒng),也有許多商業(yè)化的系統(tǒng)供選擇。 前面已經(jīng)介紹過許多公司的商業(yè)化載體、菌株和多系統(tǒng)表達(dá)體系,現(xiàn)在我想先從自己的蛋白分析講起。同樣的載體、同樣的系統(tǒng),很可能表達(dá)這個蛋白表達(dá)量奇高,但是另外一個就是做不出來,所以沒有萬能的載體,只有永恒的分析。當(dāng)然如果你的蛋白曾經(jīng)在原核系統(tǒng)中成功表達(dá)出來那是最好的,選擇同樣的載體表達(dá)成功率會高很多。如果沒有也最好嘗試找一些曾經(jīng)表達(dá)過和你的蛋白擁有相類似結(jié)構(gòu)的文獻(xiàn)。比如大部分含有哺乳動物src同源的SH2蛋白相互作用域的蛋白都是用pGEX系列載體表達(dá)出來的。根據(jù)經(jīng)驗而言,含有較少半胱氨酸和脯氨酸的、平均大小為60kD的單體蛋白較容易表達(dá)。 在下面將列出幾個影響表達(dá)的因素,大家可以在表達(dá)前根據(jù)這幾個因素自己分析一下: 1、翻譯起始位點 現(xiàn)在大部分的表達(dá)載體都提供起始位點,所以它已經(jīng)把起始密碼子與核糖體結(jié)合位點的距離進(jìn)行優(yōu)化了,一般情況下不需要自己再加,不過還是要留意載體圖譜上是否注明有起始密碼子和終止密碼子 2、GC含量 表達(dá)序列中的GC含量超過70%的時候可能會降低蛋白在大腸桿菌中的表達(dá)水平。GC含量可以利用DNA STAR、Vector NTI Suite等軟件進(jìn)行預(yù)測。 3、二級結(jié)構(gòu) 在起始密碼子附近的mRNA二級結(jié)構(gòu)可能會抑制翻譯的起始或者造成翻譯暫停從而產(chǎn)生不完全的蛋白。如果利用軟件分析DNA或RNA結(jié)構(gòu)上有柄(stem)結(jié)構(gòu),并且結(jié)合長度超過8個堿基,這種結(jié)構(gòu)會因為位點專一突變等因素而變得不穩(wěn)定。 4、基因或者蛋白的大小 一般說來小于5kD或者大于100kD的蛋白都是難以表達(dá)的。蛋白越小,越容易被降解。在這種情況下可以采取串聯(lián)表達(dá),在每個表達(dá)單位(即單體蛋白)間設(shè)計蛋白水解或者是化學(xué)斷裂位點。如果蛋白較小,那么加入融合標(biāo)簽GST、Trx、MBP或者其它較大的促進(jìn)融合的蛋白標(biāo)簽就較有可能使蛋白正確折疊,并以融合形式表達(dá)。 對于另一個極端,大于60kD的蛋白建議使用較小的標(biāo)簽,如6×組氨酸標(biāo)簽。對于結(jié)構(gòu)研究較清楚的蛋白可以采取截取表達(dá)。當(dāng)然表達(dá)時要根據(jù)目的進(jìn)行截取,如果是要進(jìn)行抗體制備而截取,那么一定要保證截取的部位抗原性較強(qiáng)。對于抗原性也可以利用軟件分析,比如Vector NIT Suite或者一些在線軟件,不過在分析之余也要認(rèn)識到這是一種數(shù)據(jù)統(tǒng)計的結(jié)論,如果蛋白和免疫動物親緣關(guān)系較遠(yuǎn)的話還是不妨一試的。5、親疏水性 這也是一種經(jīng)驗之談,相信經(jīng)常做表達(dá)的人都發(fā)現(xiàn)表達(dá)親水區(qū)域時表達(dá)量會比較高,如果你要表達(dá)一個膜蛋白,那么勸你做好長期抗戰(zhàn)的準(zhǔn)備吧。有許多軟件可以對氨基酸的親疏水性進(jìn)行分析,比如Vector NIT Suite,除此之外還可以利用在線跨膜區(qū)預(yù)測軟件http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/ 對跨膜區(qū)進(jìn)行預(yù)測。對于自己表達(dá)的蛋白有所了解后就可以開始對載體進(jìn)行選擇了,目前商業(yè)化的載體基本上包含以下幾個元件: 除了上面標(biāo)出的元件外還需要有復(fù)制起點,它對于控制質(zhì)粒的拷貝數(shù)非常重要;另外就是篩選標(biāo)記了,比如藍(lán)白斑篩選的lacZ,各種抗生素標(biāo)記。在以上幾個元件中,我們需要注意的是負(fù)責(zé)調(diào)節(jié)與啟動的元件,也就是調(diào)控子和啟動子。其中啟動子對于蛋白表達(dá)的速度起著舉足輕重的作用,它與最終蛋白的表達(dá)量、是否可融密不可分。這里,對于世面上廣泛銷售的幾種原核表達(dá)載體使用的啟動子進(jìn)行總結(jié)。 啟動子 來源 調(diào)控手段(濃度) 強(qiáng)度 LacUV5 乳糖操縱元 lacI/IPTG (0.1-1mM) 強(qiáng) Trp 色氨酸操縱元 trpR 3-β-吲哚丙烯酸 強(qiáng) Tac 結(jié)合了色氨酸啟動子的-35序列和乳糖啟動子的-10序列 lacI/IPTG (0.1-1mM) 強(qiáng) PL λ噬菌體 λcI阻遏物/溫度 強(qiáng) 噬菌體T5 T5噬菌體 lacI/IPTG (0.1-1mM) 強(qiáng) pBAD 阿拉伯糖操縱元 AraBAD/阿拉伯糖(1μm-10mM) 嚴(yán)謹(jǐn) T7 T7 RNA聚合酶 lacI/IPTG (0.1-1mM) 非常強(qiáng) 乳糖操縱子是應(yīng)用最廣泛的調(diào)控模式,除了IPTG這種化學(xué)誘導(dǎo)方式之外還有利用吲哚丙烯酸和阿拉伯糖的化學(xué)誘導(dǎo)。如果你害怕這些化學(xué)物質(zhì)會損害細(xì)菌的生長,那么你可以嘗試?yán)脺囟日T導(dǎo)的載體,如:pDH2。它利用PL啟動子,在溫度上升到42℃后進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)。 可以看到在所有啟動子里屬T7啟動子最強(qiáng),它可以將大腸桿菌的資源最大程度地調(diào)用過來表達(dá)外源蛋白。這樣一些難表達(dá)的蛋白都可以在pET系統(tǒng)里面表達(dá)出來,但是是不是越強(qiáng)就越好呢?如果你需要表達(dá)蛋白是可溶的,那么T7啟動子就不那么適合了。較弱的啟動子轉(zhuǎn)錄速度較慢,這樣對于表達(dá)可溶、穩(wěn)定、完整的蛋白比較有利。 Novagen可以說是的pET系統(tǒng)是最王牌的T7啟動子表達(dá)系統(tǒng),可是當(dāng)T7啟動子的強(qiáng)啟動效應(yīng)不受歡迎的時候怎么辦呢?在這里給讀者留個小小的疑問,看看大家有沒有仔細(xì)看筆者寫的Novagen篇。提示一下,雖然它轉(zhuǎn)錄速度快,但是可以控制它的拷貝數(shù),又或者是……利用這些原理Novagen載體也可以毒性高的外源蛋白。 載體上除了啟動子這個需要注意之外,另外一個就是標(biāo)簽了。很多標(biāo)簽是為了增加蛋白的可溶性,也有一些是為了方便鑒定表達(dá)產(chǎn)物,所以在表達(dá)時可以選擇加標(biāo)簽。是否加標(biāo)簽要看個人需要,筆者認(rèn)為如果是表達(dá)一個人家沒表達(dá)過的蛋白最好還是加標(biāo)簽,這樣方便將來鑒定。如果從經(jīng)濟(jì)角度考慮最好加入6×組氨酸標(biāo)簽,筆者曾經(jīng)以為加什么標(biāo)簽都無所謂(前提是不需要融合表達(dá)),結(jié)果加了個Novagen的T7•Tag,等到鑒定的時候發(fā)現(xiàn)單抗那么貴。而且還不好買的,一些較少人用的標(biāo)簽會讓你很傷腦筋。這也是表達(dá)前要準(zhǔn)備的功課之一哦。 好了,如果你選好了載體,那么下一步就是設(shè)計引物的。相信大多數(shù)人都是利用PCR把目的基因調(diào)出來的吧。設(shè)計引物可以使用一下兩個軟件,Primer Premier或者Oligo。如果要表達(dá)全長,其實也就沒那么多要考慮,從一頭一尾找至少8個匹配序列在加上與載體匹配的序列就可以了。不過,我還是有以下幾點提醒一下各位: 1、這一點其實很容易理解,但是有時也容易被遺忘。那就是先查查表達(dá)外源片段中含有什么內(nèi)切酶位點,不要設(shè)計重了,否則酶切時發(fā)現(xiàn)怎么老是有預(yù)期外的小片段出現(xiàn)。2、根據(jù)載體上的酶切位點設(shè)計引物,現(xiàn)在許多類似T載原理的克隆方法也可以應(yīng)用到原核表達(dá)中了,如果T載克隆方法要定向很多時候要多加4個堿基,設(shè)計引物時候可別忘了加。在設(shè)計酶切位點的5’端不要忘了加保護(hù)堿基,不同內(nèi)切酶所需的保護(hù)堿基不同,SalⅠ不需要保護(hù)堿基,EcoRⅤ需要1個,NotⅠ需要2個,HindⅢ最好有3個。一般情況下,都設(shè)計2個。3、注意啟始密碼子和終止密碼子的讀碼框。如果載體上有ATG可以不另外加了,但是通常ATG后不是緊跟外源片段的,如果中間含有載體序列,務(wù)必確定中間這段序列不會造成你外源序列的移碼。按情況需要,可以加1到2個堿基在引物中使讀碼框正確。有始有終,同樣正常的終止密碼子才能保證蛋白的產(chǎn)出。大部分載體也有終止密碼子,如果你對載體的不放心,也可以在引物中設(shè)計上終止密碼子,這樣萬無一失。4、還有就是設(shè)計一對引物需要注意的地方:一對引物之間Tm值相差不宜過大,能一樣最好;一對引物不宜形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)、互相配對,若配對時最好不要是G-C的結(jié)合(可以用軟件分析);3'端以G、C結(jié)尾為宜等等。如果要詳細(xì)研究可以看一下PCR技術(shù)的相關(guān)書籍,很厚。還有就是記得把上游引物設(shè)計成有義鏈,下游設(shè)計成反義鏈,否則就沒有片段出現(xiàn)了。雖然這是很小的地方,可是經(jīng)常會被忽略。5、如果你是進(jìn)行截取表達(dá),那么除了之前提到的要注意截取親水區(qū),還有一點就是對密碼子的使用頻率進(jìn)行分析。如果在大腸桿菌中使用較少的密碼子在外源片段中連續(xù)出現(xiàn),還是避開它為上策。 看完這么多是不是覺得有點思緒萬千呢。以前給我上課的一位教授說過,做試驗,那要大膽設(shè)計,小心求證。快去合成引物開始表達(dá)吧。萬一表達(dá)不出來,還有下篇呢。" 如果實在是找不到原因,那么就把實驗按照標(biāo)準(zhǔn)的流程再做一次,更換全部試劑,因為有時候原因是我們無法想到的,不如重新開始! |
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