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為什么PCR之后的電泳會出現(xiàn)這樣的條帶?圖片不太清楚,左邊三條是內(nèi)參 已有4人參與
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PCR擴增后出現(xiàn)的條帶與預計的大小不一致(作者:凌波麗) 2013年9月24日 PCR擴增后出現(xiàn)的條帶與預計的大小不一致,或大或小,或者同時出現(xiàn)特異性擴增帶與非特異性擴增帶,其原因與對策如下: I.引物與靶序列不完全互補、 或引物聚合形成二聚體、或者GC比鄰遠離50%。對策:重新設計引物。 II.Mg2+ 離子濃度過高、退火溫度過低,及PCR循環(huán)次數(shù) 過多有關(guān)。 III.靶序列或擴增產(chǎn)物的交叉污染:這種污染有兩種原因: 1.整個基因組或大片段的交叉污染,導致非特異性帶出現(xiàn)。 這種非特異性帶出現(xiàn)可用以下方法解決: (1)在加樣槍的接頭和吸桿之間加上脫脂消毒棉花,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或濺出離心管外。 (2)除了酶及不能耐高溫的物質(zhì)外,所有試劑或器材均應高壓消毒。 (3)所用離心管及樣進槍頭等均應一次性使用。必要時,在加標本前,反應管和試劑用紫外線照射,以破壞存在的核酸。 (4)重新提取模板DNA。 2.空氣中的小片段核酸污染,這些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。有時候可能會互相拼接,與引物互補后,可擴增出PCR產(chǎn)物,而導致非特異性帶出現(xiàn)的產(chǎn)生。雖然這樣的可能性比較小。 對策:實驗前對實驗室充分通風,試驗時盡量加上PCR試劑暴露于空氣中的時間,還可用巢式PCR方法來減輕或消除空氣中的小片段核酸造成的污染,最基本的解決辦法:重新提取模板DNA。 IV.考慮使用熱啟動模式。可以購買商用的PCR熱啟動酶,也可以用石蠟隔離模式。 V.調(diào)整變性和退火溫度時間。 VI.更換所有緩沖溶液,使用全部新配的緩沖溶液。這點可能太基本了,很不被重視。 VII.適當調(diào)高復性溫度。沒有重新設計引物,不要大范圍地變動反應體系的復性溫度,要在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)變動。如果出現(xiàn)非特異性擴增,則把在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)把復性溫度提高1-3度;如果出現(xiàn)任何擴增帶,則把在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)把復性溫度降低1-3度。 VIII.Taq酶的專一性擴增不夠。往往一些來源的DNA聚合酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來源的酶 則不出現(xiàn),酶量過多有時也會出現(xiàn)非特異性擴增。其對策:改用專一性更強的DNA聚合酶,或者使用兩種不同的DNA聚合酶,減低酶量或調(diào)換另一來源的專一性高的酶。更換DNA聚合酶時,酶量不要太大,以免出現(xiàn)特異性擴增。 酶制劑中的甘油可能也是干擾因素?梢约尤敕磻w系之前用超濾去除酶制劑中的甘油。 IX.使用梯度降低PCR。在以基因組DNA為模板進行PCR擴增時,非特異性擴增較多,這時,最初的退火溫度選用比Tm高5-10度。然后每隔1個循環(huán),退火溫度降低1-2度,直至到達正常的Tm附近的退火溫度。 X.適當減低的dNTP的濃度,可以分梯度進行。 一般的調(diào)整順序(不是絕對的):若PCR反應后無任何產(chǎn)物,可先調(diào)整Mg2+ 濃度,Mg2+ 濃度不高于10.0mmol/L,不低于1.0mmol/L,調(diào)整時從低往高分梯度加,每次升高0.05mmol/L.最常使用Mg2+ 濃度為1.5mmol/L。同時全部重新配所有的緩沖溶液。 然后調(diào)整引物濃度,在調(diào)整引物與模板的結(jié)合溫度,調(diào)整變性和退火溫度時間。接著或者與引物調(diào)整同時,把酶換成其他類型的DNA聚合酶(高保真酶或者熱啟動酶)。再往后,檢測和重新提取DNA模板(包括用質(zhì)譜或者電泳檢測DNA是否變短,清除酚和SDS,檢測模板濃度,必要時要對DNA模板測序)。再往后和使用梯度降低dNTP。最后這些都做了仍未奏效,那么就要重新設計引物了。一般是最先調(diào)整Mg2+ 濃度,最后重新設計引物,其他順序可變。Mg2+ 濃度與dNTP的濃度一般同方向偶聯(lián)調(diào)節(jié)。 XI.適當減少退貨時間和提高退火溫度。 XII.在反應體系中加入:1.5mol/L的甜菜堿或者5%的DMSO可以提高PCR擴增效率。 過去,我也回答過PCR非特異性擴增的問題,但是這次回答我在2013年8月14日重新編輯核對的。 XIII.使用巢式PCR。 更正:2樓和3樓:調(diào)整鎂離子濃度時,可以與dNTP正相關(guān)的梯度調(diào)整,兩者同方向分梯度調(diào)節(jié),一般不要反方向調(diào)節(jié);但是可以單獨鎂離子濃度,而dNTP濃度不動;有時候dNTP濃度調(diào)整不大時也可以不動鎂離子濃度,因為鎂離子濃度太高了,可能會增加非特異性擴增,或者有時候就是可以不動dNTP濃度而只調(diào)節(jié)鎂離子濃度也能夠增加PCR的專一性。 我參考了yujitianqing的帖子,http://www.gaoyang168.com/bbs/viewthread.php?tid=6198669 過去我沒有注意到,而后我去查閱了文獻,有的文獻與yujitianqing的帖子的內(nèi)容基本上一致,也有些文獻與yujitianqing的帖子的內(nèi)容并不一致。 |
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