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膜蛋白表達(dá)問題
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我最近在做原核生物的膜蛋白在大腸桿菌中的表達(dá),大致是將目的基因克隆到pET-30a的表達(dá)載體上,然后轉(zhuǎn)化到BL21-DE3的感受態(tài)細(xì)胞中,誘導(dǎo)表達(dá),通過SDS-PAGE電泳,觀察結(jié)果?墒乾F(xiàn)在的問題是根本就沒有目的蛋白條帶,所以求有經(jīng)驗(yàn)的蟲友們不吝賜教。不勝感激…… |
【分子生物】EPI帖 |
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首先,克隆肯定是沒有問題的。酶切驗(yàn)證過,而且也測過序列,完全正確。 其次,在誘導(dǎo)表達(dá)蛋白時(shí),我的膜蛋白A大小是37.5KD,跑SDS-PAGE,發(fā)現(xiàn)有差不多大小的蛋白,另外我又做了膜蛋白B的表達(dá)(目的大小是53.1KD),跑SDS-PAGE,沒有目的條帶,而且發(fā)現(xiàn)膜蛋白A的膠圖與膜蛋白B的膠圖很類似。所以很有可能是我的表達(dá)系統(tǒng)的問題,下一步就選擇一種普通的蛋白作為對(duì)照,發(fā)現(xiàn)膜蛋白A的目的大小條帶也在普通蛋白膠圖上?偠灾さ鞍譇、膜蛋白B在表達(dá)宿主菌中均沒有表達(dá)。不知道是什么情況? 最后,你說的“我現(xiàn)在做的從克隆構(gòu)一直做到抗性篩選成功,底物濃度從0-0.5,平板抗性梯度很明顯~”這句話沒有太明白。我的目的基因沒有某方面的功能。 本人是新手,還望多多指點(diǎn)…… |
木蟲 (正式寫手)
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正在做這方面實(shí)驗(yàn),你的情況說的不是很清楚。 1,通過別的手段鑒定是否表達(dá),如構(gòu)建的克隆基因有某方面功能可以直接用于篩選。我現(xiàn)在做的從克隆構(gòu)一直做到抗性篩選成功,底物濃度從0-0.5,平板抗性梯度很明顯~ 2,菌體PCR或者提質(zhì)粒PCR驗(yàn)證,提質(zhì)粒酶切驗(yàn)證。 3,測序。 把前期工作做好,然后開始誘導(dǎo)表達(dá)。 4,蛋白電泳 誘導(dǎo)濃度:IPTG誘導(dǎo)過夜誘導(dǎo),濃度0.5mM,37℃,在加IPTG誘導(dǎo)的同時(shí)加0.1M的底物增大選擇壓力。 5,離心除去菌液上清,加PBS,菌體超聲破碎,一部分離心分為破碎上清和沉淀,一部分跑全蛋白。理論上膜蛋白跑全蛋白就行。 6,優(yōu)化誘導(dǎo)條件。括溫度、時(shí)間等。你可以搜索一下論壇,很多這方面的帖子。 |
木蟲 (正式寫手)
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如果37℃過夜都不表達(dá),其他溫度誘導(dǎo)也不會(huì)太理想吧?~ 膜蛋白做起來難啊。 這是pET手冊(cè)的內(nèi)容: 溫度 37℃生長常常會(huì)使一些蛋白累積形成包涵體,而30℃生長則可能產(chǎn)生可溶的和有活性的蛋白(Schein and Noteborn, 1989)。如果你打算利用一些pET 載體中的信號(hào)肽序列輸出蛋白的話,在25℃或30℃生長和培養(yǎng)可能是最優(yōu)化的。在某些情況下,低溫(15-20℃)延長誘導(dǎo)時(shí)間(過夜)可以使溶解性蛋白的產(chǎn)量達(dá)到最大。 |
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