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一葦杭之xmc

銀蟲 (初入文壇)

[求助] 急~~~!!sds-page電泳,重復(fù)了n次,都是這種死樣子! 已有1人參與

一跑就散了,而且各泳道都擴散到一起去了!!而且整個過程中都跑的不整齊,不是一條線的那種。我這次特地把maker點在中間了,是不是真的是我樣品問題啊,而且感覺跑的比較快。已經(jīng)重復(fù)n次了,累死不說,心都哇涼哇涼的,求各位大神幫助啊~!
我提蛋白用的成分是7M尿素 2M硫脲 2% tritonx-100 蛋白酶抑制劑 50mM DTT
提取之后我稀釋定量,基本上都在2g/L左右的。然后直接上樣。求大神指教如何處理樣品,求~~~
急~~~。。ds-page電泳,重復(fù)了n次,都是這種死樣子!
DSC_0634.jpg


急~~~。!sds-page電泳,重復(fù)了n次,都是這種死樣子!-1
DSC_0633.jpg

[ Last edited by 一葦杭之xmc on 2013-10-22 at 16:30 ]
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西瓜

榮譽版主 (知名作家)

★ ★ ★ ★ ★ ★
kx444555: 金幣+1, 鼓勵交流 2013-10-23 10:39:55
gyesang: 金幣+5, 歡迎老版主常來! 2013-10-24 12:24:18
gyesang: 回帖置頂 2013-10-24 12:24:21
給你個SDS-PAGE“恥辱堂”,自己對照下看看吧
http://www.ruf.rice.edu/~bioslabs/studies/sds-page/sdsgoofs.html
4樓2013-10-22 20:35:58
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回帖支持 ( 顯示支持度最高的前 50 名 )

woai43

金蟲 (正式寫手)

【答案】應(yīng)助回帖


感謝參與,應(yīng)助指數(shù) +1
myprayer: 金幣+1, 贈人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 。 2013-10-23 08:34:20
應(yīng)該是尿素和硫脲的問題,我之前用尿素純化his標(biāo)簽蛋白sds-page就跟你這個差不多。Maker是被兩側(cè)蛋白擠到了所以上面寬下面窄。你可以嘗試把樣品透析降低尿素試試看
7樓2013-10-23 08:12:01
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zhixuec

木蟲 (著名寫手)

【答案】應(yīng)助回帖

尿素和硫脲的確會影響你的電泳的

我們一般用了尿素和硫脲后將樣品透析除去這兩張物質(zhì),再SDS-PAGE的
酷愛の族
10樓2014-01-21 11:36:55
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普通回帖

同東中郎將

新蟲 (小有名氣)

【答案】應(yīng)助回帖

★ ★
感謝參與,應(yīng)助指數(shù) +1
amisking: 金幣+2, 感謝發(fā)帖應(yīng)助,幫助蟲子 2013-10-22 18:26:21
1,檢測一下你的電泳槽是否漏液。
2,每個樣品間間隔一個空白,試一下。
3,你的上樣量是多少?感覺樣品沒多少蛋白。
4,脫色脫的時間短,看不清。
曾子曰:“士不可以不弘毅,任重而道遠(yuǎn)。仁以為己任,不亦重乎?死而后已,不亦遠(yuǎn)乎?”
2樓2013-10-22 17:14:02
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一葦杭之xmc

銀蟲 (初入文壇)

引用回帖:
2樓: Originally posted by 同東中郎將 at 2013-10-22 17:14:02
1,檢測一下你的電泳槽是否漏液。
2,每個樣品間間隔一個空白,試一下。
3,你的上樣量是多少?感覺樣品沒多少蛋白。
4,脫色脫的時間短,看不清。

電泳槽漏液的話是不是裝的時候沒裝緊啊~我用bradford法定量出來的濃度有1~2g/L左右,上樣量是25微升。其實我試過好幾次了,每次提取樣品都跑出來是這樣,各個泳道都連到一起了。。。marker跑的都沒什么問題,脫色是我今天實在是太沮喪了,脫到這樣懶得往下做了。
欲速則不達(dá)
3樓2013-10-22 17:32:32
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atlanticwi

金蟲 (正式寫手)

琴美喜歡發(fā)呆 不喜歡發(fā)脾氣

引用回帖:
4樓: Originally posted by 西瓜 at 2013-10-22 20:35:58
給你個SDS-PAGE“恥辱堂”,自己對照下看看吧
http://www.ruf.rice.edu/~bioslabs/studies/sds-page/sdsgoofs.html

特此過來頂大哥的貼~
Let God do with it as He wills
5樓2013-10-22 21:28:00
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storm26

禁蟲 (小有名氣)


感謝參與,應(yīng)助指數(shù) +1
myprayer: 金幣+1, 贈人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 。 2013-10-23 08:33:59
本帖內(nèi)容被屏蔽

6樓2013-10-22 21:38:32
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凌波麗

專家顧問 (知名作家)

【答案】應(yīng)助回帖

★ ★
感謝參與,應(yīng)助指數(shù) +1
gyesang: 金幣+2, 鼓勵交流! 2013-10-24 12:25:10
SDS電泳帶彌散和拖尾的原因和改進(jìn)措施(2013-10-7)

1.原因一:上樣量過多,應(yīng)該減少上樣量。對策:加樣體積根據(jù)樣品濃度和凝膠厚度靈活掌握。一般上樣體積為10-15µL(即2-10µg蛋白質(zhì))。如果樣品很稀上樣量可以達(dá)到100µL。
2.原因二:樣品溶解不完全。
對策:
(1)樣品應(yīng)該充分溶解:保持各種蛋白質(zhì)樣品和Marker在上樣前能夠充分溶解,上樣前最好離心一下,實在溶解不掉的顆粒就去掉。
(2)可以根據(jù)分子量標(biāo)準(zhǔn)的蛋白質(zhì)試劑盒的要求加入樣品溶解液;如果是自行配置標(biāo)準(zhǔn)和未知樣品,按照0.5-1.0mg/L樣品溶解液。溶解后,將其轉(zhuǎn)移至Eppendorf管,蓋上蓋子(可以在蓋子處加上卡子)后在110度沸水中水浴加熱3分鐘(可以在薄泡沫塑料板上鉆出幾個與Eppendorf管直徑形同的圓洞,Eppendorf管放下去直到蓋子邊緣約束不能再往下為止,把薄泡沫塑料板的暴露出Eppendorf管的管體大部分的那一面放入沸水浴鍋中,薄泡沫塑料板自然飄在沸水表面,便于取用和加熱,也可避免沸水濺起?梢砸慌鷮τ诙鄠Eppendorf管進(jìn)行不同時間的沸水浴。不要把Eppendorf管扔進(jìn)沸水浴鍋中,蓋子可能會被沖開),而后在室溫下冷卻待用。如果較長時間不用,則將樣品放入零下20度冰箱中儲存,需用時在取出后使用前在110度沸水中加熱3分鐘室溫冷卻后再上樣,以去掉樣品蛋白質(zhì)中的亞穩(wěn)態(tài)聚合體。
(3)改變樣品緩沖溶液使得樣品能夠充分溶解,SDS 用量要充分。

SDS電泳帶變寬的原因和改進(jìn)措施(2013-10-7)
除了以上兩條原因外,還有:
原因三:SDS電泳帶與鄰近蛋白質(zhì)電泳相連。除了上樣量過多和樣品溶解不完全外,凝膠的加樣孔泄露會使得電泳帶變寬。加樣孔泄露往往由于凝膠與玻璃板之間產(chǎn)生裂紋引起。對策:此時只能重新制備凝膠,梳子拔起時要小心等凝膠凝聚完畢,速度不宜過快,拔起的方向要垂直于凝膠表面;要避免凝膠兩側(cè)的玻璃板與凝膠之間產(chǎn)生裂紋,在凝膠制備過程中不要擠壓凝膠兩側(cè)的玻璃板。
8樓2013-10-23 11:23:31
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凌波麗

專家顧問 (知名作家)

【答案】應(yīng)助回帖

★ ★
gyesang: 金幣+2, 鼓勵交流! 2013-10-24 12:25:01
SDS-PAGE electrophoresis的蛋白質(zhì)條帶模糊、分辨不佳和條帶擴散的原因和解決方法

2013年10月24日

蛋白質(zhì)條帶模糊、分辨不佳和條帶擴散可能有多種原因。
1.加樣量過多,會引起蛋白質(zhì)條帶模糊、分辨不佳和條帶擴散。為了提高分辨率,應(yīng)該避免加樣過多,小體積樣品可給出窄帶.加樣體積根據(jù)樣品濃度和凝膠厚度靈活掌握。一般上樣體積為10-15µL(即2-10µg蛋白質(zhì))。如果樣品很稀上樣量可以達(dá)到100µL。
2.加樣沒有立即電泳會引起蛋白質(zhì)條帶模糊、分辨不佳和條帶擴散。加熱蛋白質(zhì)樣品變性需要沸水浴3-5分鐘即可,加熱變性后的蛋白質(zhì)樣品要放置到室溫即電泳,不要久放,因為蛋白質(zhì)的二硫鍵在高溫下可能是會斷開,但是暴露于空氣中溫度降低會重新形成二硫鍵,而且可能在過久放置過程中蛋白質(zhì)可能會再折疊,更不要扔到冰箱里保存。
3.電泳凝膠濃度選擇不適當(dāng)引起蛋白質(zhì)條帶模糊、分辨不佳和條帶擴散。請根據(jù)廠商的說明書配制對應(yīng)蛋白質(zhì)相對分子量的適當(dāng)濃度的電泳凝膠,使得蛋白質(zhì)組分的以充分分離。
4.通?拷把氐碾娪編Х直媛什患选(yīng)根據(jù)分子量與凝膠孔徑的關(guān)系,灌制適當(dāng)濃度的凝膠。
5.蛋白質(zhì)樣品被水解。注意除去蛋白質(zhì)樣品的內(nèi)源性的水解酶,不要反復(fù)凍融。
6.電泳時間過長或過短。溴酚藍(lán)達(dá)到分離膠的底部即應(yīng)該關(guān)閉電泳電源。
7.低于10Kd的蛋白質(zhì)分子在SDS-PAGE electrophoresis不可能獲得好的分辨率,此時要用Tricine膠。
8.緩沖溶液、SDS都要新鮮配制。
9樓2013-10-24 01:24:55
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