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benpaopinle金蟲(chóng) (小有名氣)
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[求助]
氨基DNA與羧基CdTe量子點(diǎn)的連接
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| 各位大俠,小蟲(chóng)一直嘗試EDC/NHS連接氨基DNA和羧基CdTe量子點(diǎn),都沒(méi)能成功,參考的文獻(xiàn)做法不大一樣,但原理應(yīng)該是一致的,不知問(wèn)題出在哪兒,焦急等待大俠相助!!我用的緩沖液是PB,活化液pH為6.0,50mM,不另外加鹽;反應(yīng)液pH為7.4,10mM,另外含有100mM的KCl!嘗試用pH6.0的緩沖液溶解量子點(diǎn),并加入一定量的EDC/NHS(約100倍于量子點(diǎn)的濃度),經(jīng)活化后,放置一夜,有黑色顆;蛐鯛畛恋懋a(chǎn)生,此時(shí)還有熒光,當(dāng)離心后,上清液無(wú)熒光,將黑色顆粒超聲分散到pH7.4的緩沖液后,再測(cè)沒(méi)有熒光了!還嘗試過(guò)直接用pH7.4 的緩沖液直接加EDC/NHS活化2h,后加入DNA 的,最后溶液也沒(méi)了熒光。前后兩次的溶液都為2mL,量子點(diǎn)濃度約為50nM,DNA為0.75uM!求助各位有經(jīng)驗(yàn)的大俠相助,會(huì)追加金幣。! |
羧基活化EDC|DCC,NHS |
金蟲(chóng) (小有名氣)
木蟲(chóng) (小有名氣)
| 第一種情況可以很明確的回答你,羧基穩(wěn)定的量子點(diǎn)(MPA或者TGA),是不能在酸性條件下穩(wěn)定存在的,所以你的6.0的緩沖溶液是不行的,酸性條件下會(huì)導(dǎo)致量子點(diǎn)團(tuán)聚沉淀,然后沒(méi)有熒光;你的第二種方法應(yīng)該是正確的,一般用超濾管先小轉(zhuǎn)速離心,出去溶液中多余的穩(wěn)定劑或者一些Cd和穩(wěn)定劑的絡(luò)合物,然后用7.4的PBS重新分散量子點(diǎn),隨后加入EDC和NHS攪拌活化,在加入DNA或者抗原抗體攪拌反應(yīng),然后4度過(guò)夜保存,第二天用紫外,熒光,紅外或者是動(dòng)態(tài)光散射表征。 |
金蟲(chóng) (小有名氣)
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很感謝你的回復(fù),我倒是真沒(méi)用過(guò)超濾管離心,所以在樣品處理上有很大不足!其次,有關(guān)活化時(shí)間和活化后的QDs處理上我還在摸索,對(duì)條件沒(méi)有把握!至于你提到的反應(yīng)溫度,我表示有點(diǎn)疑問(wèn),為什么不在室溫(文獻(xiàn)中說(shuō)的,具體不清楚)或37℃下反應(yīng)?關(guān)于表征的手段,我這兩天又再?lài)L試向修飾后的QDs中加入GO,來(lái)測(cè)熒光變化,以此來(lái)推斷是否有修飾上,不知蟲(chóng)友對(duì)此有何看法或建議?希望保持聯(lián)系!! |
金蟲(chóng) (小有名氣)

用戶(hù)注銷(xiāo) (小有名氣)
金蟲(chóng) (小有名氣)
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真是不好意思,關(guān)于這個(gè)問(wèn)題,我也是很迷茫,沒(méi)有很好的表征手段!我查過(guò)文獻(xiàn),也詢(xún)問(wèn)過(guò)師兄、老師,都沒(méi)有什么好的方法!比如說(shuō)從熒光方面,有文獻(xiàn)報(bào)道QDs修飾上DNA后表面缺陷減少,熒光強(qiáng)度增強(qiáng),但也有說(shuō)熒光強(qiáng)度下降的,比如被DNA猝滅,但并沒(méi)有具體說(shuō)明為什么;熒光發(fā)射位置前后不變或移動(dòng)很小。有關(guān)于紫外的變化,目前我也沒(méi)怎么嘗試,因?yàn)闃悠妨刻伲瑳](méi)法處理,但從文獻(xiàn)上看,肯定有DNA的紫外峰,何況還能根據(jù)DNA的吸收強(qiáng)度估算每個(gè)量子點(diǎn)上修飾了幾條DNA。除了熒光、紫外,紅外也可以檢測(cè)酰胺鍵來(lái)判斷是否有修飾上。動(dòng)態(tài)光散射也可以根據(jù)修飾前后QDs的水力半徑來(lái)粗略估計(jì),但樣品肯定是經(jīng)過(guò)離心洗脫后的了。除上面的手段外,我真不知道該怎么表征,TEM和SEM應(yīng)該看不到量子點(diǎn)表面的DNA啊,我真的也是很糾結(jié)...說(shuō)這么多,也不知道你是怎樣修飾的?希望可以交流一下! |
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金蟲(chóng) (小有名氣)
木蟲(chóng) (正式寫(xiě)手)
金蟲(chóng) (小有名氣)
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