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瓊脂糖凝膠電泳:同一批樣每次結(jié)果不一致,為什么?_? 已有2人參與
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PCR擴(kuò)增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計(jì)的大小不一致(作者:凌波麗) 2013年9月24日 PCR擴(kuò)增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計(jì)的大小不一致,或大或小,或者同時(shí)出現(xiàn)特異性擴(kuò)增帶與非特異性擴(kuò)增帶,其原因與對(duì)策如下: I.引物與靶序列不完全互補(bǔ)、 或引物聚合形成二聚體、或者GC比鄰遠(yuǎn)離50%。對(duì)策:重新設(shè)計(jì)引物。 II.Mg2+ 離子濃度過(guò)高、退火溫度過(guò)低,及PCR循環(huán)次數(shù) 過(guò)多有關(guān)。 III.靶序列或擴(kuò)增產(chǎn)物的交叉污染:這種污染有兩種原因: 1.整個(gè)基因組或大片段的交叉污染,導(dǎo)致非特異性帶出現(xiàn)。 這種非特異性帶出現(xiàn)可用以下方法解決: (1)在加樣槍的接頭和吸桿之間加上脫脂消毒棉花,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或?yàn)R出離心管外。 (2)除了酶及不能耐高溫的物質(zhì)外,所有試劑或器材均應(yīng)高壓消毒。 (3)所用離心管及樣進(jìn)槍頭等均應(yīng)一次性使用。必要時(shí),在加標(biāo)本前,反應(yīng)管和試劑用紫外線照射,以破壞存在的核酸。 (4)重新提取模板DNA。 2.空氣中的小片段核酸污染,這些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。有時(shí)候可能會(huì)互相拼接,與引物互補(bǔ)后,可擴(kuò)增出PCR產(chǎn)物,而導(dǎo)致非特異性帶出現(xiàn)的產(chǎn)生。雖然這樣的可能性比較小。 對(duì)策:實(shí)驗(yàn)前對(duì)實(shí)驗(yàn)室充分通風(fēng),試驗(yàn)時(shí)盡量加上PCR試劑暴露于空氣中的時(shí)間,還可用巢式PCR方法來(lái)減輕或消除空氣中的小片段核酸造成的污染,最基本的解決辦法:重新提取模板DNA。 IV.考慮使用熱啟動(dòng)模式?梢再(gòu)買商用的PCR熱啟動(dòng)酶,也可以用石蠟隔離模式。 V.調(diào)整變性和退火溫度時(shí)間。 VI.更換所有緩沖溶液,使用全部新配的緩沖溶液。這點(diǎn)可能太基本了,很不被重視。 VII.適當(dāng)調(diào)高復(fù)性溫度。沒(méi)有重新設(shè)計(jì)引物,不要大范圍地變動(dòng)反應(yīng)體系的復(fù)性溫度,要在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)變動(dòng)。如果出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增,則把在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)把復(fù)性溫度提高1-3度;如果出現(xiàn)任何擴(kuò)增帶,則把在引物的Tm少5-10度的范圍內(nèi)把復(fù)性溫度降低1-3度。 VIII.Taq酶的專一性擴(kuò)增不夠。往往一些來(lái)源的DNA聚合酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來(lái)源的酶 則不出現(xiàn),酶量過(guò)多有時(shí)也會(huì)出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增。其對(duì)策:改用專一性更強(qiáng)的DNA聚合酶,或者使用兩種不同的DNA聚合酶,減低酶量或調(diào)換另一來(lái)源的專一性高的酶。更換DNA聚合酶時(shí),酶量不要太大,以免出現(xiàn)特異性擴(kuò)增。 酶制劑中的甘油可能也是干擾因素?梢约尤敕磻(yīng)體系之前用超濾去除酶制劑中的甘油。 IX.使用梯度降低PCR。在以基因組DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增時(shí),非特異性擴(kuò)增較多,這時(shí),最初的退火溫度選用比Tm高5-10度。然后每隔1個(gè)循環(huán),退火溫度降低1-2度,直至到達(dá)正常的Tm附近的退火溫度。 X.適當(dāng)減低的dNTP的濃度,可以分梯度進(jìn)行。 一般的調(diào)整順序(不是絕對(duì)的):若PCR反應(yīng)后無(wú)任何產(chǎn)物,可先調(diào)整Mg2+ 濃度,Mg2+ 濃度不高于10.0mmol/L,不低于1.0mmol/L,調(diào)整時(shí)從低往高分梯度加,每次升高0.05mmol/L.最常使用Mg2+ 濃度為1.5mmol/L。同時(shí)全部重新配所有的緩沖溶液。 然后調(diào)整引物濃度,在調(diào)整引物與模板的結(jié)合溫度,調(diào)整變性和退火溫度時(shí)間。接著或者與引物調(diào)整同時(shí),把酶換成其他類型的DNA聚合酶(高保真酶或者熱啟動(dòng)酶)。再往后,檢測(cè)和重新提取DNA模板(包括用質(zhì)譜或者電泳檢測(cè)DNA是否變短,清除酚和SDS,檢測(cè)模板濃度,必要時(shí)要對(duì)DNA模板測(cè)序)。再往后和使用梯度降低dNTP。最后這些都做了仍未奏效,那么就要重新設(shè)計(jì)引物了。一般是最先調(diào)整Mg2+ 濃度,最后重新設(shè)計(jì)引物,其他順序可變。Mg2+ 濃度與dNTP的濃度一般同方向偶聯(lián)調(diào)節(jié)。 XI.適當(dāng)減少退貨時(shí)間和提高退火溫度。 XII.在反應(yīng)體系中加入:1.5mol/L的甜菜堿或者5%的DMSO可以提高PCR擴(kuò)增效率。 過(guò)去,我也回答過(guò)PCR非特異性擴(kuò)增的問(wèn)題,但是這次回答我在2013年8月14日重新編輯核對(duì)的。 XIII.使用巢式PCR。 調(diào)整鎂離子濃度時(shí),可以與dNTP正相關(guān)的梯度調(diào)整,兩者同方向分梯度調(diào)節(jié),一般不要反方向調(diào)節(jié);但是可以單獨(dú)鎂離子濃度,而dNTP濃度不動(dòng);有時(shí)候dNTP濃度調(diào)整不大時(shí)也可以不動(dòng)鎂離子濃度,因?yàn)殒V離子濃度太高了,可能會(huì)增加非特異性擴(kuò)增,或者有時(shí)候就是可以不動(dòng)dNTP濃度而只調(diào)節(jié)鎂離子濃度也能夠增加PCR的專一性。 我參考了yujitianqing的帖子,http://www.gaoyang168.com/bbs/viewthread.php?tid=6198669 過(guò)去我沒(méi)有注意到,而后我去查閱了文獻(xiàn),有的文獻(xiàn)與yujitianqing的帖子的內(nèi)容基本上一致,也有些文獻(xiàn)與yujitianqing的帖子的內(nèi)容不一致。 具體是那種情況,我們可以在具體從各種可能性中選擇,或者在在根據(jù)具體情況添加因素,目前我只能想到這些。 |
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6樓: Originally posted by 凌波麗 at 2014-04-27 10:07:56 PCR擴(kuò)增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計(jì)的大小不一致(作者:凌波麗) 2013年9月24日 PCR擴(kuò)增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計(jì)的大小不一致,或大或小,或者同時(shí)出現(xiàn)特異性擴(kuò)增帶與非特異性擴(kuò)增帶,其原因與對(duì)策如下: I.引物與靶序 ... 謝謝你! 我的這個(gè)循環(huán)次數(shù)是比較多,經(jīng)過(guò)了2次PCR,每次有35個(gè)循環(huán)。只是不知道這結(jié)果出現(xiàn)的條帶位置不對(duì)的話,還是不是目的條帶?還是出現(xiàn)了其他的非特異性擴(kuò)增。這一點(diǎn)我準(zhǔn)備拿去測(cè)序。 另外為什么同一批結(jié)果不同電泳成圖都不一樣呢,這一點(diǎn)我很奇怪。 |
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對(duì)于月牙形狀的條帶,我感覺(jué)應(yīng)該是膠孔的問(wèn)題,拔梳子的時(shí)候很可能會(huì)產(chǎn)生膠孔不均勻。我的經(jīng)驗(yàn)是,在拔梳子前,把一部分電解液沖到膠孔上。因?yàn)槭嶙邮鞘杷牧献龅,所以加上電解液,?huì)比較容易拔出來(lái)梳子,膠孔形狀也比較好。對(duì)于圖new1和new2,我還真的沒(méi)有遇到過(guò)類似情況。愿LZ實(shí)驗(yàn)順利! P.S.我也是剛剛開(kāi)始PCR和跑膠的,經(jīng)驗(yàn)多有不足,如果表達(dá)有誤,見(jiàn)諒見(jiàn)諒。 |

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7樓: Originally posted by wardwaads at 2014-04-28 09:40:13 謝謝你! 我的這個(gè)循環(huán)次數(shù)是比較多,經(jīng)過(guò)了2次PCR,每次有35個(gè)循環(huán)。只是不知道這結(jié)果出現(xiàn)的條帶位置不對(duì)的話,還是不是目的條帶?還是出現(xiàn)了其他的非特異性擴(kuò)增。這一點(diǎn)我準(zhǔn)備拿去測(cè)序。 另外為什么同一批結(jié) ... 對(duì)于同一批次結(jié)果不同電泳成圖不一樣,不知道是不是制膠的問(wèn)題。兩次制的膠會(huì)不會(huì)不是很一致? |

新蟲(chóng) (小有名氣)
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