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[交流]
鎳柱有很多雜蛋白是緩沖液的問題還是什么問題? 已有6人參與
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可溶性蛋白的純化 1) 平衡緩沖液:pH7.4的50mM磷酸緩沖液含0.5M NaCl,含20mM咪唑。 2) 洗脫緩沖液:pH7.4的50mM磷酸緩沖液含0.5M NaCl,含500mM咪唑。 3) 取1ml鎳瓊脂糖凝膠FF或鎳NTA瓊脂糖凝膠FF預(yù)裝柱,用10ml平衡緩沖液平衡,然后取破碎上清10ml樣品以0.5ml/min上樣,然后2ml/管分管收集。 4) 用15ml平衡緩沖液洗去未吸附的樣品,流速1-2ml/min,2ml/管收集。 5) 用5 ml洗脫緩沖液洗去未吸附的樣品,流速1-2ml/min,2ml/管收集。 6) 再用5ml平衡緩沖液平衡柱子,灌滿20%乙醇,封閉。 這些是我實(shí)驗用到的,可以鎳柱純化效果還是不理想,雜蛋白,怎么辦? |
金蟲 (小有名氣)
木蟲 (正式寫手)
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你的洗脫緩沖液含咪唑的濃度需要摸索,按你的說法,是直接洗脫了。你可以試試梯度洗脫。方法如下 1.平衡,用10ml平衡buffer沖洗鎳柱。0.5ml/min,收集,1ml/管。 2.load,樣品用0.25ml/min流速,上樣。最好上樣前測一下你的蛋白吸光度,在穿過液中再測一下。如果達(dá)到10%上樣吸光度,就不要上了。(前提是你有在線監(jiān)測UV的) 3.平衡,用10ml平衡buffer沖洗鎳柱,0.5ml/min,收集,1ml/管。 4.洗脫,用20ml洗脫buffer以0.5ml/min流速進(jìn)行線性洗脫。1ml/管收集。檢測你的目的蛋白,收集純度較高的一段。 5.再生。5ml洗脫buffer以0.25ml/min流速清洗柱子后,立即用平衡buffer沖洗20ml。加20%乙醇,封閉。 |
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