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膜蛋白表達問題
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我最近在做原核生物的膜蛋白在大腸桿菌中的表達,大致是將目的基因克隆到pET-30a的表達載體上,然后轉(zhuǎn)化到BL21-DE3的感受態(tài)細胞中,誘導(dǎo)表達,通過SDS-PAGE電泳,觀察結(jié)果。可是現(xiàn)在的問題是根本就沒有目的蛋白條帶,所以求有經(jīng)驗的蟲友們不吝賜教。不勝感激…… |
【分子生物】EPI帖 |
木蟲 (正式寫手)
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就是從得到該基因,克隆至載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌TransT1,提質(zhì)粒再次轉(zhuǎn)化目的菌株,然后做抗性梯度驗證這個過程。 我做的是某氨基酸輸出蛋白,是一種膜蛋白,約200aa,抗性梯度很漂亮,涉及專利 。因為表達這個輸出蛋白,肯定會引起菌體對該氨基酸有較大抗性,所以使用含有不同濃度該氨基酸的平板驗證是否有抗性。我已經(jīng)驗證出2個基因了。還是有些問題的。 1,如果某一個pET不表達,一系列的pET可能都不表達,有些人這么認為,我沒有經(jīng)歷過,供你參考。為什么pET不表達,這個。。。好難啊,我也不知道。 2,膜蛋白確定可以表達?某些基因難表達,或不表達~我去,這個,有點難以接受啊,有相關(guān)資料嗎?可以查一下。 3,原核生物的膜蛋白合不合適BL21表達。 如果是上述原因,建議換基因,換載體。 4,得到蛋白質(zhì)序列,做密碼子優(yōu)化。這一步或許可以解決很多問題。因為某原核膜蛋白密碼子肯定不同于大腸桿菌密碼子,我做的這個膜蛋白是通過基因合成的方式得到的:NCBI得到蛋白質(zhì)序列——根據(jù)宿主(大腸桿菌)優(yōu)化密碼子(優(yōu)化后的密碼子NCBI比對跟原核酸序列沒有任何相關(guān)性)——克隆表達,有用rosetta(de3菌株)的,可以表達稀有密碼子。 5,western blot 看是不是真的木有表達。 6,有木有異源信號肽?膜蛋白信號肽可能影響表達。 7,有木有可能是二聚體或多聚體,你再看看? 8,突變造成的終止或不表達,pET載體突變造成的不表達也不能排除(轉(zhuǎn)化到pET后測序正確可以排除這個)。 9,優(yōu)化各種條件,甚至包括培養(yǎng)條件,搖床轉(zhuǎn)速,誘導(dǎo)時間,誘導(dǎo)溫度。 糾結(jié)的膜蛋白~ |
木蟲 (正式寫手)
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正在做這方面實驗,你的情況說的不是很清楚。 1,通過別的手段鑒定是否表達,如構(gòu)建的克隆基因有某方面功能可以直接用于篩選。我現(xiàn)在做的從克隆構(gòu)一直做到抗性篩選成功,底物濃度從0-0.5,平板抗性梯度很明顯~ 2,菌體PCR或者提質(zhì)粒PCR驗證,提質(zhì)粒酶切驗證。 3,測序。 把前期工作做好,然后開始誘導(dǎo)表達。 4,蛋白電泳 誘導(dǎo)濃度:IPTG誘導(dǎo)過夜誘導(dǎo),濃度0.5mM,37℃,在加IPTG誘導(dǎo)的同時加0.1M的底物增大選擇壓力。 5,離心除去菌液上清,加PBS,菌體超聲破碎,一部分離心分為破碎上清和沉淀,一部分跑全蛋白。理論上膜蛋白跑全蛋白就行。 6,優(yōu)化誘導(dǎo)條件。括溫度、時間等。你可以搜索一下論壇,很多這方面的帖子。 |
木蟲 (正式寫手)
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如果37℃過夜都不表達,其他溫度誘導(dǎo)也不會太理想吧?~ 膜蛋白做起來難啊。 這是pET手冊的內(nèi)容: 溫度 37℃生長常常會使一些蛋白累積形成包涵體,而30℃生長則可能產(chǎn)生可溶的和有活性的蛋白(Schein and Noteborn, 1989)。如果你打算利用一些pET 載體中的信號肽序列輸出蛋白的話,在25℃或30℃生長和培養(yǎng)可能是最優(yōu)化的。在某些情況下,低溫(15-20℃)延長誘導(dǎo)時間(過夜)可以使溶解性蛋白的產(chǎn)量達到最大。 |
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首先,克隆肯定是沒有問題的。酶切驗證過,而且也測過序列,完全正確。 其次,在誘導(dǎo)表達蛋白時,我的膜蛋白A大小是37.5KD,跑SDS-PAGE,發(fā)現(xiàn)有差不多大小的蛋白,另外我又做了膜蛋白B的表達(目的大小是53.1KD),跑SDS-PAGE,沒有目的條帶,而且發(fā)現(xiàn)膜蛋白A的膠圖與膜蛋白B的膠圖很類似。所以很有可能是我的表達系統(tǒng)的問題,下一步就選擇一種普通的蛋白作為對照,發(fā)現(xiàn)膜蛋白A的目的大小條帶也在普通蛋白膠圖上?偠灾さ鞍譇、膜蛋白B在表達宿主菌中均沒有表達。不知道是什么情況? 最后,你說的“我現(xiàn)在做的從克隆構(gòu)一直做到抗性篩選成功,底物濃度從0-0.5,平板抗性梯度很明顯~”這句話沒有太明白。我的目的基因沒有某方面的功能。 本人是新手,還望多多指點…… |
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