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[交流]
表達蛋白折疊不正確會有活性麼?
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如題,37℃,1mMIPTG,6h,表達細胞超聲波破碎后,離心,SDS-PAGE顯示,上清跟沉淀都有目的蛋白,但是沉淀明顯更多,測定了上清酶活(底物為海藻酸鈉),有活性,但是做純化的時候悲劇了,死活掛不上柱子,蛋白都在流川液中. 有朋友說,試試低溫誘導,減少包涵體,這里我有幾個疑問 1:我上清中明顯是有目的蛋白的,也有酶活,為何掛不上柱子,莫非是誘導溫度過高,翻譯過快,把GST折疊進去了,所以掛不上,但是這樣的話,蛋白豈不是也沒有活性的?可事實是有的…… 2:有表達有酶活是否等于折疊正確? |
【分子生物】EPI帖 |
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GST標簽本身就是比較特殊的,表達時候容易形成標簽的二聚體,而標簽的二聚體是不掛柱的。所以,能用his就用his。 還有就是你說的,可能是溫度高了,來不及正確折疊,就把標簽給包裹了。 不知道你有沒有酶切位點,酶切之后看看還有沒有活性。 酶活和折疊正確與否關(guān)系不大,因為每個蛋白或者酶都有一個活性中心,只要這個活性中心沒變性,那么酶或者蛋白還是能起作用的。 比如說,腸激酶是兩個亞基組成,其實起作用的只是那個輕鏈。 希望能幫上。 |
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至于二聚體的形成,這好像和你用的質(zhì)粒還有宿主有關(guān)系,涉及基因調(diào)控表達方面的了,怎么減少我沒具體方案。不過,既然是表達過程形成的,我們可以降低宿主的表達速度,使蛋白有條不紊的折疊,我覺得就能降低二聚體的形成。 降低溫度肯定是要的,IPTG濃度能用低的就不要高的。 酶切是看你在標簽和蛋白之間有沒有設(shè)計相應的酶切位點。比如說TEV,EK之類的特異性位點。 我之前說的酶切是讓你檢驗一下你的標簽有沒有被包裹,酶切之后會不會影響活性。 |
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