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電泳結(jié)果一直是只有兩三個個條帶可見,跑的是斑馬魚勻漿,用的是勻漿管手動勻漿,用的PBS做勻漿介質(zhì),同一塊膠跑的小鼠肝臟勻漿條帶很多。希望大家?guī)兔Ψ治鱿略,是不是樣品提取的問題。提取的蛋白量不夠? DSC01062.JPG |
蛋白質(zhì)生物學(xué)實驗經(jīng)驗 |
金蟲 (初入文壇)
專家顧問 (知名作家)
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專家經(jīng)驗: +218 |
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1.好像電泳帶的拖尾比較嚴(yán)重。樣品融解效果不佳或分離膠濃度過大引起的。 處理辦法:加樣前離心;選擇適當(dāng)?shù)臉悠肪彌_液,加適量樣品促溶劑(表面活性劑增容);電泳緩沖液時間可能過長。 2.蛋白質(zhì)樣品是否存在降解?或者樣品純化時丟失了不少蛋白質(zhì)。包括未使用樣品促溶劑(表面活性劑增容)導(dǎo)致了蛋白質(zhì)樣品丟失; 3.樣品也似未濃縮好。應(yīng)適當(dāng)增加濃縮膠的長度;保證濃縮膠貯液的pH正確(6.7);適當(dāng)降低電壓。 4.緩沖溶液是不是有問題?或者防止太久。 制膠緩沖液:濃縮膠選擇pH6.7,分離膠選擇pH8.9,選擇tris-HCL系統(tǒng),TEMED與AP:AP提供自由基,TEMED是催化劑,催化自由基引起的聚合反應(yīng)進行;十二烷基硫酸鈉(SDS):陽離子去污劑,作用有四:去蛋白質(zhì)電荷、解離蛋白質(zhì)之間的氫鍵、取消蛋白分子內(nèi)的疏水作用、去多肽折疊。 |
銅蟲 (初入文壇)
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首先,小鼠肝臟勻漿中的雜質(zhì)(如脂類,多糖等)要比整條的斑馬魚少得多。所以,同樣的處理方法,在斑馬魚蛋白提取中效果會不好。 其次,蛋白條帶拖尾和彌散也同樣是因為雜質(zhì)沒有去除干凈。但是從marker的條帶看,膠應(yīng)該沒有大的問題。 動物全蛋白提取的話,個人認(rèn)為只用PBS是不夠的,PBS的pH緩沖范圍有限,有些蛋白不容易溶解進入,可能隨著你離心就沉淀下來了。建議你能使用丙酮沉淀法,既能除去大部分雜質(zhì),也能夠除鹽。雖然一些蛋白可能會丟失,但是會比PBS勻漿的方法提取的蛋白要多。另外,我們提蛋白都是用液氮冷凍研缽研磨,再加入蛋白裂解液超聲的。你可以試一試。 |
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謝謝您的解答,我看到一個方法是說: 肝每50mg加(裂解液)0.5mlRIPA和5uLPMSF(不能預(yù)先加入,否則失效) 手動或電動勻漿。注意保持低溫(埋在冰中),快速勻漿。 將樣品轉(zhuǎn)移到1.5ml離心管中,12000g離心,4℃,2-3min。 是按照這種操作步驟嗎?那是否還需要PBS? 裂解液是用RIPA裂解液嗎?是自己配置的還是買現(xiàn)成的效果會好一點?如果買買哪個牌子的好一點?還有PMSF是買哪個品牌的好一點? 能給我發(fā)一下你們平常實驗的具體實驗步驟嗎? 像PMSF、裂解液的濃度和每mg肝臟的用量, 超聲的條件設(shè)置,從南京建成給的實驗方法學(xué)看到的可以用國產(chǎn)超聲波發(fā)生儀400安培,5秒/次,間歇反復(fù)3-5次。這樣操作可以嗎? 剛接觸電泳實驗,不懂的很多問題有點多,麻煩您解答一下 |
銅蟲 (初入文壇)
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我在百度百科上查了RIPA裂解液的說明,RIPA主要是從動物組織和動物細(xì)胞中抽取的可溶性蛋白的。那么脂溶性蛋白很有可能就丟失了。但是每種提取蛋白的方法都有優(yōu)劣,也都會丟失部分蛋白。如果條件允許,你可以都嘗試一下,確定你所關(guān)注的差異點可能存在于膠圖的哪一段pH值內(nèi),進而選擇針對這段pH值的蛋白提取的方法(如酸性區(qū)域蛋白或堿性區(qū)域蛋白)。商業(yè)化的裂解液我個人認(rèn)為都一樣是配出來的,只要自己選用進口的試劑,嚴(yán)格的操作,質(zhì)量不會比他們差。我們的裂解液都是自己配的,PMSF用的是sigma的。超聲的話,我們是400W,2s超聲+6s間隔,冰浴,因為我們用的是1.5mlEP管裝的,體積小,所以很害怕超聲的時候發(fā)熱,蛋白變性。 |
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